Классификация аминокислот | Химия онлайн
Аминокислоты классифицируют по следующим структурным признакам.
I. Классификация по взаимному положения функциональных групп
В зависимости от взаимного расположения амино- и карбоксильной групп аминокислоты подразделяют на α- , b- , g- , d- , e- и т. д.
Греческая буква при атоме углерода обозначает его удаленность от карбоксильной группы.
II. Классификация по строению бокового радикала (функциональным группам)
Алифатические аминокислоты
Моноаминомонокарбоновые кислоты: глицин, аланин, валин, изолейцин, лейцин.
Оксимоноаминокарбоновые кислоты (содержат-ОН-группу): серин, треонин.
Моноаминодикарбоновые кислоты (содержат СООН-группу): аспартат, глутамат (за счёт второй карбоксильной группы несут в растворе отрицательный заряд).
Амиды моноаминодикарбоновых кислоты (содержат NH2СО-группу): аспарагин, глутамин.
Диаминомонокарбоновые кислоты (содержат NH2-группу): лизин, аргинин (за счёт второй аминогруппы несут в растворе положительный заряд).
Серусодержащие кислоты: цистеин, метионин.
Ароматические аминокислоты: фенилаланин, тирозин, триптофан.
Гетероциклические аминокислоты: триптофан, гистидин, пролин.
Иминокислоты: пролин.
Важнейшие α–аминокислоты
III. Классификация по полярности бокового радикала (по Ленинджеру)
Выделяют четыре класса аминокислот, содержащих радикалы следующих типов.
Гидрофобные аминокислоты располагаются внутри молекулы белка, тогда как гидрофильные – на внешней поверхности, что делает гидрофильными и хорошо растворимыми в воде молекулы белка.
Благодаря этому свойству белки хорошо связывают воду, удерживая жидкость в крови, в межклеточном пространстве и внутри клеток.
1. Неполярные (гидрофобные)
К неполярным (гидрофобным) относятся аминокислоты с неполярными R-группами и одна серусодержащая аминокислота:
— алифатические: аланин, валин, лейцин, изолейцин
— ароматические: фенилаланин, триптофан.
— серусодержащие: метионин
— иминокислота: пролин.
2. Полярные незаряженные
Полярные незаряженные аминокислоты по сравнению с неполярными лучше растворяются в воде, более гидрофильны, так как их функциональные группы образуют водородные связи с молекулами воды.
К ним относятся аминокислоты, содержащие:
— полярную ОН-группу (оксиаминокислоты): серин, треонин и тирозин
— HS-группу: цистеин
— амидную группу: глутамин, аспарагин
— и глицин (R-группа глицина, представленная одним атомом водорода, слишком мала, чтобы компенсировать сильную полярность a-аминогруппы и a-карбоксильной группы).
3. Заряженные отрицательно при рН-7 (кислые)
Аспарагиновая и глутаминовая кислоты относятся к отрицательно заряженным аминокислотам.
Они содержат по две карбоксильные и по одной аминогруппе, поэтому в ионизированном состоянии их молекулы будут иметь суммарный отрицательный заряд:
4. Заряженные положительно при рН-7 (основные)
К положительно заряженным аминокислотам принадлежат лизин, гистидин и аргинин.
В ионизированном виде они имеют суммарный положительный заряд:
В зависимости от характера радикалов природные аминокислоты также подразделяются на нейтральные, кислые и основные. К нейтральным относятся неполярные и полярные незаряженные, к кислым – отрицательно заряженные, к основным – положительно заряженные.
IV. Классификация по кислотно-основным свойствам
В зависимости от количества функциональных групп различают кислые, нейтральные и основные аминокислоты.
Основные
Аминокислоты, в которых число аминогрупп превышает число карбоксильных групп, называют основными аминокислотами: лизин, аргинин, гистидин:
Кислые
Если в аминокислотах имеется избыток кислотных групп, их называют кислыми аминокислотами: аспарагиновая и глутаминовая кислоты:
Все остальные аминокислоты относятся к нейтральным.
V. По числу функциональных групп
Аминокислоты по числу функциональных групп можно разделить моноаминомонокарбоновые, моноаминодикарбоновые, диаминомонокарбоновые:
VI.Биологическая классификация (по способности синтезироваться в организме человека и животных)
Заменимые аминокислоты – десять из 20 аминокислот, входящих в состав белков, могут синтезироваться в организме человека. К ним относятся: глицин (гликокол), аланин, серин, цистеин, тирозин, аспарагиновая и глутаминовая кислоты, аспарагин, глутамин, пролин.
Незаменимые аминокислоты (8 аминокислот) – не могут синтезироваться в организме человека и животных и должны поступать в организм в составе белковой пищи.
Абсолютно незаменимых аминокислот восемь: валин, изолейцин, лейцин, треонин, метионин, лизин, фенилаланин, триптофан.
Незаменимые аминокислоты входят часто в состав пищевых добавок, используются в качестве лекарственных препаратов.
Условно незаменимые (2 аминокислоты) — синтезируются в организме, но в недостаточном количестве, поэтому частично должны поступать с пищей. Такими аминокислотами являются гистидин, аргинин.
Для детей также незаменимыми являются гистидин и аргинин.
Для человека одинаково важны оба типа аминокислот: и заменимые, и незаменимые. Большая часть аминокислот идет на построение собственных белков организма, но без незаменимых аминокислот организм существовать не сможет.
При недостатке каких-либо аминокислот в организме человека в течение непродолжительного времени могут разрушаться белки соединительной ткани, крови, печени и мышц, а полученный из них «строительный материал» — аминокислоты идут на поддержание нормальной работы наиболее важных органов — сердца и мозга.
Дефицит аминокислот приводит к ухудшению аппетита, задержке роста и развития, жировой дистрофии печени и другим тяжелым нарушениям.
При этом наблюдается снижение аппетита, ухудшение состояния кожи, выпадение волос, мышечная слабость, быстрая утомляемость, снижение иммунитета, анемия.
Избыток аминокислот может вызвать развитие тяжелых заболеваний, особенно у детей и в юношеском возрасте. Наиболее токсичными являются метионин (провоцирует риск развития инфаркта и инсульта), тирозин (может спровоцировать развитие артериальной гипертонии, привести к нарушению работы щитовидной железы) и гистидин (может способствовать возникновению дефицита меди в организме и привести к заболеваниям суставов, ранней седине, тяжелым анемиям).
В условиях нормального функционирования организма, когда присутствует достаточное количество витаминов (В6, В12, фолиевой кислоты) и антиоксидантов (витамины А, Е, С и селен), избыток аминокислот не наносит вред организму.
Продукты с повышенным содержанием отдельных незаменимых аминокислот
Качество некоторых пищевых белков относительно белков женского молока
Аминокислоты
Вопрос 104
Строение
и классификация альфа-аминокислот
Природные
аминокислоты отвечают общей формуле
RCH(NH2)COOH
и отличаются строением радикала R.
Формулы и тривиальные названия важнейших
аминокислот приведены в таблице. Для
биологического функционирования
аминокислот в составе белков определяющим
является полярность радикала R. По этому
признаку аминокислоты разделяют на
следующие основные группы (см. таблицу).
Таблица.
Важнейшие a -аминокислоты
RCH(NH2)COOH
Формула | Название | Обозначение | pI |
Аминокислоты, | |||
| Глицин | Gly | 5,97 |
| Аланин | Ala | 6,0 |
| Валин | Val | 5,96 |
| Лейцин | Leu | 5,98 |
| Изолейцин | Ile | 6,02 |
| Фенилаланин | Phe | 5,48 |
| Триптофан | Trp | 5,89 |
Пролин | Pro | 6,30 | |
| Метионин | Met | 5,74 |
| Цистин | (Cys)2 | 5,0 |
Аминокислоты,
| |||
Серин | Ser | 5,68 | |
| Треонин
|
Thr
| 5,60 |
| Гидроксипролин | Hyp | 5,8 |
| Аспаргин | Asn | 5,41 |
| Глутамин | Gln | 5,65 |
Аминокислоты, | |||
| Лизин | Lys | 9,74 |
| 5-Гидроксилизин |
| 9,15 |
| Аргинин | Arg | 10,76 |
| Гистидин | His | 7,59 |
Аминокислоты, | |||
| Аспаргиновая | Asp | 2,77 |
| Глутаминовая | Gly | 3,22
|
| Тирозин | Tyr | 5,66 |
| Цистеин | Cys | 5,07 |
Классификация
1.Аминокислоты,
содержащие неполярный радикал R. Такие
группы располагаются
внутри молекулы белка и обуславливают
гидрофобные взаимодействия.
2.Аминокислоты,
содержащие полярный неионогенный
радикал R. Аминокислоты
этого типа имеют
в составе бокового радикала полярные
группы, не способные к ионизации в водной
среде (спиртовый гидроксил, амидная
группа). Такие группы могут располагаться
как внутри, так и на поверхности молекулы
белка. Они участвуют в образовании
водородных связей с другими полярными
группами.
3.Аминокислоты,
содержащие радикал R, способный к
ионизации в водной среде с образованием
положительно или отрицательно заряженных
групп. Такие
аминокислоты содержат в боковом радикале
дополнительный основный или кислотный
центр, который в водном растворе может
соответственно присоединять или отдавать
протон.
В
белках ионогенные группы этих аминокислот
располагаются, как правило, на поверхности
молекулы и обуславливают электростатические
взаимодействия.
Классификация
По
радикалу
Неполярные:
аланин, валин, изолейцин, лейцин, пролин,
метионин, фенилаланин, триптофан,
Полярные
незаряженные (заряды скомпенсированы)
при pH=7: [], серин, треонин, цистеин,
аспарагин, глутамин, тирозин
Полярные
заряженные отрицательно при pH=7: аспартат,
глутамат
Полярные
заряженные положительно при pH=7: лизин,
аргинин, гистидин
По
функциональным группам
Алифатические
Моноаминомонокарбоновые:
глицин, аланин, валин, изолейцин, лейцин
Оксимоноаминокарбоновые:
серин, треонин
Моноаминодикарбоновые:
аспартат, глутамат, за счёт второй
карбоксильной группы несут в растворе
отрицательный заряд
Амиды
моноаминодикарбоновых: аспарагин,
глутамин
Диаминомонокарбоновые:
лизин, аргинин, несут в растворе
положительный заряд
Серосодержащие:
цистеин, метионин
Ароматические:
фенилаланин, тирозин, триптофан,
(гистидин)
Гетероциклические:
триптофан, гистидин, пролин
Иминокислоты:
пролин
По
классам аминоацил-тРНК-синтетаз
Класс
I: валин, изолейцин, лейцин, цистеин,
метионин, глутамат, глутамин, аргинин,
тирозин, триптофан
Класс
II: глицин, аланин, пролин, серин, треонин,
аспартат, аспарагин, гистидин, фенилаланин
Для
аминокислоты лизин существуют
аминоацил-тРНК-синтетазы обоих классов.
По
путям биосинтеза
Пути
биосинтеза протеиногенных аминокислот
разноплановы. Одна и та же аминокислота
может образовываться разными путями.
К тому же совершенно различные пути
могут иметь очень похожие этапы. Тем не
менее, имеют место и оправданы попытки
классифицировать аминокислоты по путям
их биосинтеза. Существует представление
о следующих биосинтетических семействах
аминокислот: аспартата, глутамата,
серина, пирувата и пентоз. Не всегда
конкретную аминокислоту можно однозначно
отнести к определённому семейству;
делаются поправки для конкретных
организмов и учитывая преобладающий
путь. По семействам аминокислоты обычно
распределяют следующим образом:
Семейство
аспартата: аспартат, аспарагин, треонин,
изолейцин, метионин, лизин.
Семейство
глутамата: глутамат, глутамин, аргинин,
пролин.
Семейство
пирувата: аланин, валин, лейцин.
Семейство
серина: серин, цистеин, глицин.
Семейство
пентоз: гистидин, фенилаланин, тирозин,
триптофан.
Фенилаланин,
тирозин, триптофан иногда выделяют в
семейство шикимата.
По
способности организма синтезировать
из предшественников
Незаменимые
Для
большинства животных и человека
незаменимыми аминокислотами являются:
валин, изолейцин, лейцин, треонин,
метионин, лизин, фенилаланин, триптофан
Заменимые
Для
большинства животных и человека
заменимыми аминокислотами являются:
глицин, аланин, пролин, серин, цистеин,
аспартат, аспарагин, глутамат, глутамин,
тирозин.
Классификация
аминокислот на заменимые и незаменимые
не лишена недостатков. К примеру, тирозин
является заменимой аминокислотой только
при условии достаточного поступления
фенилаланина. Для больных фенилкетонурией
тирозин становится незаменимой
аминокислотой. Аргинин синтезируется
в организме человека и считается
заменимой аминокислотой, но в связи с
некоторыми особенностями его метаболизма
при определённых физиологических
состояниях организма может быть приравнен
к незаменимым. Гистидин также синтезируется
в организме человека, но не всегда в
достаточных количествах, потому должен
поступать с пищей.
По
характеру катаболизма у животных
Биодеградация
аминокислот может идти разными путями.
По
характеру продуктов катаболизма у
животных протеиногенные аминокислоты
делят на три группы:
Глюкогенные
— при распаде дают метаболиты, не
повышающие уровень кетоновых тел,
способные относительно легко становиться
субстратом для глюконеогенеза: пируват,
α-кетоглутарат, сукцинил-KoA, фумарат,
оксалоацетат
Кетогенные
— распадаются до ацетил-KoA и ацетоацетил-KoA,
повышающие уровень кетоновых тел в
крови животных и человека и преобразующиеся
в первую очередь в липиды
Глюко-кетогенные
— при распаде образуются метаболиты
обоих типов
Аминокислоты:
Глюкогенные:
глицин, аланин, валин, пролин, серин,
треонин, цистеин, метионин, аспартат,
аспарагин, глутамат, глутамин, аргинин,
гистидин.
Кетогенные:
лейцин, лизин.
Глюко-кетогенные
(смешанные): изолейцин, фенилаланин,
тирозин, триптофан.
Стереоизомеры (пространственные изомеры) — химические
соединения,
имеющие одинаковое строение, но
отличающиеся пространственным
расположением атомов. Стереоизомеры
имеют одинаковую конституцию, но
различные конфигурацию и/или конформацию.
— протеиногенные — Биохимия
Среди многообразия аминокислот только 20 участвует во внутриклеточном синтезе белков (протеиногенные аминокислоты). Также в организме человека обнаружено еще около 40 непротеиногенных аминокислот. Все протеиногенные аминокислоты являются α-аминокислотами и на их примере можно показать дополнительные способы классификации.
По строению бокового радикала
Выделяют
- алифатические (аланин, валин, лейцин, изолейцин, пролин, глицин),
- ароматические (фенилаланин, тирозин, триптофан),
- серусодержащие (цистеин, метионин),
- содержащие ОН-группу (серин, треонин, опять тирозин),
- содержащие дополнительную СООН-группу (аспарагиновая и глутаминовая кислоты),
- дополнительную NH2-группу (лизин, аргинин, гистидин, также глутамин, аспарагин).
Обычно названия аминокислот сокращаются до 3-х буквенного обозначения. Профессионалы в молекулярной биологии также используют однобуквенные символы для каждой аминокислоты.
Строение протеиногенных аминокислот
По полярности бокового радикала
Существуют неполярные аминокислоты и полярные.
К неполярным относят аминокислоты, имеющие алифатические углеводородные цепи (аланин, валин, лейцин, изолейцин, метионин, пролин) и ароматические кольца (фенилаланин, триптофан).
К полярным незаряженным относятся аминокислоты, имеющие гидроксильные группы (серин, треонин, тирозин), амидные группы (аспарагин, глутамин), тиольную группу (цистеин) и глицин. Аспарагиновая и глутаминовая аминокислоты имеют в радикале дополнительную карбоксильную группу, отрицательно заряжены и, соответственно, полярны. К аминокислотам с полярными положительно заряженными радикалами относятся лизин, аргинин, гистидин.
По кислотно-основным свойствам
По кислотно-основным свойствам подразделяют нейтральные (большинство), кислые (аспарагиновая и глутаминовая кислоты) и основные (лизин, аргинин, гистидин) аминокислоты.
По незаменимости
По необходимости для организма выделяют такие, которые не синтезируются в организме и должны поступать с пищей – незаменимые аминокислоты (лейцин, изолейцин, валин, фенилаланин, триптофан, треонин, лизин, метионин). К заменимым относят такие аминокислоты, углеродный скелет которых образуется в реакциях метаболизма и способен каким-либо образом получить аминогруппу с образованием сответствующей аминокислоты. Две аминокислоты являются условно незаменимыми (аргинин, гистидин), т.е. их синтез происходит в недостаточном количестве, особенно это касается детей.
Аминокислоты гидрофильные и гидрофобные — Справочник химика 21
Аминокислоты, содержащие полярные группы, которые достаточно сильно взаимодействуют с водой, называют гидрофильными аминокислотами (Asp, Gly, Lis, His, Arg, Gly, Ser, Thr). Такие аминокислотные звенья обычно располагаются на поверхности частиц белка. Аминокислоты, имеющие неполярные боковые заместители, не несут парциальных зарядов и не сольватируются заметно водой. Они преимущественно располагаются внутри частиц белка, сводя тем самым к минимуму их соприкосновение с водой. Это гидрофобные аминокислоты. [c.337]
Д G при этом несколько различаются. В связи с этим все аминокислоты можно условно разделить на гидрофильные и гидрофобные (см. табл. 6.7). [c.348]
По полярности боковой цепи Я различают полярные и неполярные аминокислоты. К неполярным аминокислотам относятся глицин и аланин, а также гидрофобные аминокислоты — валин, лейцин, изолейцин, пролин, метионин и фенилаланин. К полярным аминокислотам причисляют серин, треоиин, цистеин, аспарагин, глутамин и триптофан (нейтральные соединения), аспарагиновую и глутаминовую кислоты и тирозин (кислые гидрофильные аминокислоты), а также лизин, аргинин и гистидин (основные гидрофильные аминокислоты). Гидрофильные полярные соединения увеличивают растворимость пептидов и белков в водных системах, в то время как нейтрально-полярные аминокислоты ответственны за каталитическую активность ферментов. В противоположность неполярным гидрофобным аминокислотам полярные аминокислоты обычно находятся на поверхности молекулы белка. [c.17]
Связи, образуемые радикалами аминокислот 1) гидрофобные радикалы участвуют в гидрофобных взаимодействиях 2) гидрофильные радикалы формируют водородные связи 3) полярные (заряженные) радикалы образуют ионные связи 4) сближение двух радикалов [c.19]
Пространство, занимаемое малыми лигандами, такими, как кислород, вода, азид-ион и СО, граничит с железопорфирином и четырьмя аминокислотами, а именно с дистальными гистидином Е7, Валином Е11, фенилаланином D1 и лейцином G8 (или лейцином В10 в миоглобине) см., например, работы [8, 172]. Последние три из названных аминокислот имеют гидрофобные боковые цепи и находятся в контакте с периферией порфиринового кольца. С другой стороны, имидазол гистидина относится к гидрофильным остаткам и соприкасается с порфирином, хотя и находится в непосредственной близости от оси Fe—X. Имидазол расположен почти перпендикулярно плоскости гема, и один из атомов азота находится на расстоянии 380 пм от плоскости гема и на расстоянии 170 пм от перпендикуляра к плоскости, проходящего через атом железа. Второй атом азота имидазола находится на поверхности белка. Первый из атомов азота образует водородные связи с молекулой воды и азид-ионом в координационной сфере комплексов Fe(III) гемоглобина и миоглобина [171, 211, 232], как это показано на структурных схемах II и III [c.159]
Рассмотрим табл. 4.5 (с. 108), в которой приведены гидрофобности аминокислот. Средняя разность этих значений при произвольном замещении одной аминокислоты на другую равна 5370 Дж/моль. В пределах условно введенных первого и второго классов аминокислот—гидрофобных (первые 10) и гидрофильных (вторые 10 аминокислот) — средние разности равны 3370 и 1640 Дж/моль соответственно. [c.281]
Современная рациональная классификация аминокислот основана на полярности радикалов (К-групп), т.е. способности их к взаимодействию с водой при физиологических значениях pH (близких к pH 7,0). Различают 5 классов аминокислот, содержащих следующие радикалы 1) неполярные (гидрофобные) 2) полярные (гидрофильные) 3) ароматические (большей частью неполярные) 4) отрицательно заряженные и 5) положительно заряженные. В представленной классификации аминокислот (табл. 1.3) приведены наименования, сокращенные английские и русские обозначения и однобуквенные символы аминокислот, принятые в отечественной и иностранной литературе, а также значения изоэлектрической точки (р1) и молекулярной массы (М). Отдельно даются структурные формулы всех 20 аминокислот белковой молекулы. [c.34]
Гидрофобными являются радикалы вал, мет и про, которые снижают общую растворимость пептида радикалы остальных аминокислот гидрофильны, вокруг них формируется гидратная оболочка, что способствует растворению пептида. [c.32]
Как и у других глобулярных белков, гидрофобные боковые цепи гемоглобина скрыты внутри молекулы, а гидрофильные выставлены наружу, что делает гемоглобин растворимым в воде. Мутация, вызывающая замену одной из гидрофильных аминокислот на гидрофобную и тем самым снижающая растворимость гемоглобина, служит причиной болезни, известной как серповидноклеточная анемия (гл. 25). [c.139]
Поведение белков в среде определяется некоторыми факторами, зависящими от самого белка. Их полиэлектролитный характер обусловлен аминокислотным составом, особенно составом кислых или основных аминокислот, а также числом и расположением гидрофильных (полярных или ионизируемых) и гидрофобных (неполярных) участков. Влияние оказывают также различные характеристики ионных сил, описанные выше, которые стабилизируют или не стабилизируют пространственную конфигурацию белка и характер ассоциированных небелковых групп. [c.415]
Пластеины вырабатывались также из других источников белка, включая клейковину пшеницы [43], зеин [82] и люцерну [83, 98]. Были испытаны также разные ферменты, в том числе микробиального происхождения [44], и были предложены технологические процессы, основанные на действии иммобилизованных ферментов [98, 114]. Для осуществления гидролиза соевых белков разработаны другой процесс и реакция пластеина в один этап [134]. Согласно этой технологии первостепенную роль как нуклеофильный агент, который связывается преимущественно концами пептидов, играет эфир аминокислоты, например этиловый эфир метионина. Более подробно это изложено ниже (см. 3.3). Этот процесс позволяет не только обогащать белки, в которых недостает некоторых аминокислот, но и включать другие гидрофильные аминокислоты, такие, как глутаминовая кислота, в гидрофобные молекулы и тем самым делать их водорастворимыми 131, 132]. Развивая эту идею, Фуйимаки с соавторами [46] запатентовали способ технологии (патент США № 4145455), который дает возможность [c.612]
Мембранные фосфолипиды играют роль растворителя для мембранных белков, создавая микроокружение, в котором последние могут функционировать. Из 20 аминокислот, входящих в состав белков, шесть являются в высшей степени гидрофобными из-за боковых групп, присоединенных к а-атому углерода, несколько аминокислот слабо гидрофобны, а остальные гидрофильны. Как мы видели в гл. 5, при образовании а-спирали гидрофобность самих пептидных групп минимизируется. Таким образом, белки могут образовывать единое целое с мембраной. Для этого нужно, чтобы их гидрофильные участки выступали из мембраны внутрь клетки и наружу, а гидрофобные пронизывали гидрофобную сердце-вину бислоя. И в самом деле, те участки белковых молекул, которые погружены в мембрану, содержат большое количество гидрофобных аминокислот и характеризуются высоким содержанием а-спиралей или 3-слоев. [c.131]
Значения ДС р отражают действие гидрофобных сил, играющих важную роль в определении третичной структуры белков. В гл. 5 подробно обсуждается все, что в настоящее время известно о природе зтих сил. Данные о ДО р можно использовать для разделения аминокислот на гидрофобный и гидрофильный классы. Как видно из табл. 2.4, представления об этих категориях неплохо согласуются с простыми интуитивными представлениями о полярности аминокислот. Казалось бы, этанол выбран в качестве эталонного неполярного растворителя произвольно, однако выбор другого растворителя лишь в незначительной степени изменяет основные выводы. [c.54]
Погруженная часть интегральных белков гидрофобна, содержит большое количество аминокислот с гидрофобными радикалами. Гидрофобные взаимодействия обеспечивают удерживание белков в липидном слое мембраны и их определенную ориентацию белок с гидрофильной выступающей частью не может повернуться этой частью в гидрофобный слой. [c.204]
Свойства подвижной и неподвижной фаз. При подборе подвижной и неподвижной фаз, а также носителя необходимо учитывать их свойства. Если носителем является гидрофильное вещество, то в качестве неподвижного растворителя применяют воду, а в качестве подвижного— органический растворитель. Например, для разделения смесей полярных веществ (аминокислот, производных пиридина и других) применяют полярный неподвижный растворитель — воду, который хорошо удерживается на таких гидрофильных носителях, как силикагель, порошок целлюлозы и др. Подвижной фазой в этом случае может служить насыщенный водный раствор фенола, н-бутанол и др. Если же носитель— гидрофобное вещество, то неподвижным растворителем должно быть неполярное вещество (масло, керосин, бензол, парафин), а подвижным — полярные органические вещества и вода. Разделение происходит вследствие различной растворимости компонентов в неподвижной фазе. [c.282]
Поверхность фибриллярных и глобулярных белков имеет большое количество гидрофильных групп, создающих вокруг этих макроструктур почти сплошную водную оболочку. Гидрофобные радикалы аминокислот, образующих полипептидные цепи, обращены, видимо, преимущественно внутрь структуры. Тем не менее неко- [c.203]
На практике для разделения аминокислот и пептидов основного характера используют системы, содержащие фенол и крезол, для нейтральных — смеси с бутиловым спиртом и уксусной кислотой или с амиловым спиртом, а для кислых аминокислот и пептидов — системы, содержащие соединения основного характера (обычно пиридин). Если соединение плохо растворимо в подвижной фазе и остается на стартовой линии, следует увеличить гидрофильность системы, например, добавлением муравьиной кислоты, метанола или формамида. Если же вещество хорошо растворимо в подвижной фазе и движется вместе с фронтом растворителя, следует использовать органический растворитель с более выраженными гидрофобными свойствами, например изоамиловый, бензиловый спирты и др. [c.126]
Интересно то, что в N-концевой области собраны гидрофобные остатки, в то время как С-концевая область построена из гидрофильных и основных аминокислот. Пептид обладает свойствами поверхностно-активного вещества. [c.285]
Сорбенты широкого применения дополняют сорбентами для решения специализированных задач разделение энантиомеров (хиральные), нуклеотидов, катехоламинов, нуклеозидов, гидрофильных и гидрофобных протеинов, биополимеров, в том числе олигонуклеотидов, вирусов, РНК и других аминокислот анализ сахаров, определение анионов в воде, полициклических ароматических углеводородов (РАН) в питьевой воде, биологически активных экстрактов. [c.238]
В стабилиза1р1и Т. с. ведущая роль принадлежит гидрофобному ядру (или ядрам), формирующемуся из липо-фильных боковых цепей аминокислот. Гидрофильные остатки могут содержаться в таком ядре лишь тогда, когда это обусловлено особыми функц. требованиями. Пов-сть глобулы содержит как гидрофильные, так и гидрофобные радикалы аминокислот. [c.588]
Структура а-спирали приведена на рис. 4.13, а, структура -листа -на рис. 4.13, б, в. а-спираль белка можно уподобить, грубо говоря, цилиндрической мицелле — либо обычной, либо инвертированной, либо цилиндрической мицелле с гидрофобной полоской на ее поверхности, в зависимости от того, каков характер аминокислот, покрывающих внешнюю поверхность этой цилиндрической мицеллы, — гидрофильный, гидрофобный, или смешанный Аналогично -структуру можно уподобить ламел-ле, обычной или инвертированной, в зависимости от характера распределения аминокислот на двух поверхностях /3-листа. Контактируя своими поверхностями, а-спирали (цилиндрические мицеллы) и -листы (ламеллы) образуют домены, которые могут охватывать часть белковой молекулы или всю ее. При взаимодействии гидрофобных поверхностей а-спиралей или /3-листов образуется плотный контакт. Если же взаимодействуют гидрофильные поверхности а-спиралей и /3-листов, то между ними возникает водная прослойка. Гидрофобные контакты а-спиралей и Д-листов заключены в основном в центральной части белковой глобулы. Гидрофильные поверхности а-спиралей и /3-листов обращены к воде, в которой находится белковая глобула. [c.85]
На поверхности белков имеется большое количество гидрофильных групп, которые обусловливают создание вокруг этих макроструктур почти сплошной водной оболочки. Гидрофобные радикалы аминокислот, образующие полипептидные цепи, обращены преимущественно внутрь структуры. Несмотря на это, некоторое количество воды может быть связано и внутри белковых макроструктур. Часть гидрофильных групп может содержаться и во внутренних отделах белковых макроструктур кроме того, некоторая часть воды может быть замкнута внутри этих структур в своеобразных ячейках , образованных гидратированными полипептид-нымн цепочками. И, наконец, дипольные молекулы воды могут попросту вклиниваться в водородные связи, не нарушая при этом их прочности. Принято различать интермицеллярную воду, находящуюся в свободном состоянии между отдельными белковыми макромолекулами, и интрамицеллярную воду, находящуюся внутри белковых глобул. Для устойчивости коллоидиых частиц имеет значение только вода, создающая внешнюю водную оболочку. Именно она и препятствует столкновению и объединению белковых макромолекул. [c.339]
Поверхность фибриллярных и глобулярных белков имеет большое количество гидрофильных групп, создающих вокруг этих макроструктур почти сплошную водную оболочку. Гидрофобные радикалы аминокислот, образующих полипептидные цепи, обращены, видимо, преимущественно внутрь структуры. Тем не менее некоторые количества воды связаны (иммобилизованы) и внутри их 1) диполи воды могут вклиниваться в водородные связи, не нарушая их прочности 2) гидрофильные группы содержатся и во внутренних отделах макроструктур белков, где связывают определенное количество воды 3) некоторое количество воды замкнуто внутри белковых молекул в своеобразных сотах , образованных гидратированными полипептидными цепочками. Благодаря этому различают интрамицеллярную воду, находящуюся внутри белковых глобул, и интермицеллярную воду, находящуюся в свободном состоянии между ними. Для устойчивости коллоидных частиц имеет значение только вода, создающая внешнюю водную оболочку, препятствующую столкновению и объединению частиц. [c.180]
Еще несколько лет назад полагали, что а-спирали вторичных структур белка соединяются сбок о бок , одна рядом с другой — субъединица белка здесь представляет собой пласт полипептидных спиралей, а не кабель или пучок. Пласты наслаиваются один на другой, соединяясь в основном водородными связями, и образуют сферическую макроструктуру (ее часто называют глобулой или макроглобулой). Так, по Пальмеру, яичный альбумин состоит из четырех пластов субъедцгшп, в каждом из которых находится по 96 аминокислотных остатков, расположенных в восьми полипептидных цепочках по 12 аминокислот (рис. 85). Пласты обращены друг к другу своими гидрофобными либо гидрофильными частями. [c.202]
Третичная структура белков, обусловленная взаимодействием боковых цепей аминокислот, не приводит к такой высокой упорядоченности структуры, как в предыдущем случае. Помимо водородных связей важным фактором стабилизации третичной структуры является образование дисульфидных связей. Молекула инсулина имеет три таких дисульфидных мостика, два из которых соединяют две отдельные полипептидные цепи в молекулу. Третичная структура часто придает белковой молекуле такую конформацию, при которой гидрофильные группы (ОН, ЫНз, СО2Н) расположены на поверхности молекулы, а гидрофобные группы (алкильные и арильные боковые цепи)[ направлены внутрь, к центру молекулы. [c.302]
У различных аминакислот гидрофобные или гидрофильные свойства выражены сильнее или слабее в соответствии с химической природой радикалов, входящих в их состав. Гидрофобность или гидрофильпость пептидов определяется их аминокислотным составом. Поверхность глобул большинства нативных белков цитоплазмы в целом гидрофильна, так как остатки гидрофобных аминокислот спрятаны внутрь глобул. У белков мембран, наоборот, гидрофобные остатки аминокислот располагаются на поверхности. Впрочем, [c.168]
Рассмотрение принципа действия и особенностей использования аминокислотного анализатора начнем с того, что сформулируем представления об анализируемом препарате. Для наиболее интересного случая — анализа состава белка — им является смесь 20 природных аминокислот. Все компоненты этой смеси представляют одинаковый интерес, подлежат полному разделению и количественной оценке. Интервал. молекулярных масс простирается ог 75 (Gly) до 204 (Тгр), диапазон значений р1 — от 2,97 (Glu) до 10,76 (Arg). Различия в стеиени гидрофобности тоже выражены сильно от гидрофильных дикарбоновых и оксикислот до весьма гидрофобных, несущих довольно протялароматические боковые группы. Заметим сразу, что такие различия должны облегчить задачу хроматографического разделенпя, но вряд лн позволят обойтись без ступенчатой смены элюентов. В обычных условиях хроматографии все алшнокислоты достаточно устойчивы, но следует обратить внимание с этой точки зрения и на предшествующий хроматографии этап исчерпывающего гидролиза белков и пептидов (от него будут зависеть и результаты анализа). Агрегация аминокислот маловероятна, за исключением возможности окисления цистеинов до цистинов. Не-специфическая сорбция за счет гидрофобных взаимодействий с материалом матрицы безусловно возможна, но здесь она будет использоваться в интересах фракционирования. [c.515]
Перечисленным требованиям в наибольшей степени отвечает циклический антибиотик валиномицин (см. рис. 6.6, II), который относится к депсипептидам (цикл образуют аминокислоты и а-оксикислоты жирного ряда). Характерной особенностью валиномицина является то, что гидрофильные полярные группы входят во внутреннюю полость антибиотика, что позволяет им участвовать в образовании комплексов с ионами металлов. Гидрофобные углеводородные радикалы образуют внешнюю оболочку и обеспечивают растворимость комплексов в органической фазе мембраны. Валиномицин образует устойчивые комплексы с калием и гораздо более слабые — с натрием. Различие обусловлено размерами полости, которая точно соответствует диаметру негидратированного иона калия. [c.207]
Как указывалось ранее, наклон (табл. 4.11,4.12) является объемным В1фиальным коэффициентом парного взаимодействия растворенных частиц одного типа и указывает, по какому механизму происходит взаимодействие. Положительные значения для описываемых аминокислот и пептидов в воде указывают, что молекулы взаимодействуют по гидрофильному механизму (диполь-дипольные силы, водородные связи). Присутствие 18-краун-б изменяет знак 5у для пептидов на отрицательный, т.е. комплексообразование пептид-краун препятствует гидрофильному взаимодействию пептид-пептид и делает его гидрофобным. Более слабое комплексообразование с 15-краун-5 несколько уменьшает положительные значения 5 для пептидов, но их знак не меняется. Присутствие 12-краун-4 в водных растворах диглицина и [c.219]
Боковые цепи. Результаты предшествующего рассмотрения в определенной степени предопределяют и ответ на вопрос о соответствии конформационных состояний боковых цепей аминокислотных остатков в белках и свободных молекулах метиламидов N-ацетил-а-аминокислот. В самом деле, трудно представить наличие полного соответствия у основных цепей и отсутствие такового у боковых цепей. Тем не менее анализ конформационных состояний последних с точки зрения ближних взаимодействий не лишен целесообразности. Для удобства рассмотрения боковые цепи аминокислот можно разделить на гидрофобные (неполярные) и гидрофильные (полярные). Конформации гидрофобных боковых цепей определяются прежде всего ван-дер-ваальсовыми взаимодействиями, которые могут иметь как стабилизирующий, так и дестабилизирующий характер, В первом случае они называются дисперсионными, или лондоновскими, взаимодействиями. У монопептидов из-за небольшого числа атомов в молекулах энергия дисперсионных взаимодействий невелика, и поэтому их конформационные состояния определяются в основном мощными силами отталкивания. У полярных боковых цепей значительную роль могут играть также (но не исключительно ) электростатические взаимодействия и водородные связи. Среди боковых цепей гидрофобных остатков можно выделить цепи, имеющие разветвление при атоме СР (Val, Не) и не имеющие такого разветвления. К последним относится группа аминокислотных остатков Phe, Туг, Тгр, His с ароматическими боковыми цепями. Изложенные в предшествующем разделе результаты теоретического конформационного анализа метиламида N-aцeтил- -фeнилaлaнинa (см. табл. 11,14) свидетельствуют о том, что в этой молекуле пространственные формы основной и боковой цепей взаимосвязаны каждой форме основной цепи соответствуют определенные энергетически выгодные положения заместителя, На рис, 11.26 представлена конформационная карта ср-у фенил аланинового монопептида, разделенная пунктирными линиями на области, [c.186]
Разделение аминокислотных остатков на гидрофобные и гидрофильные до некоторой, степени условно. В сущности, следует говорить о степени гидрофобности остатка и ввести ее количественную мер.у. В качестве нее Тенфорд предложил величину изменения свободной энергии AF, приходящуюся на боковую группу свободной аминокислоты, при переносе аминокислоты из С2Н5ОН в воду [105]. В табл. 4.11 приведены значения AF, экс- [c.229]
Как мы видели (см. стр. 22У), гидрофобиость аминокислотного остатка может быть оценена, согласно Тенфорду, количественно— изменением свободной энергии Af при переносе аминокислоты из С2Н3ОН в воду (см. табл. 4.11). Вычислим среднюю разность величин S.F при произвольном замещении любого остатка на любой — без учета различной встречаемости остатков, пользуясь данными табл. 4.11. По всем 20 аминокислотам AAF = 1280 кал/моль. В пределах условно введенных первого и второго классов — гидрофобных аминокислот (первые 10) и гидрофильных аминокислот (вторые 10) средние разности равны 805 и 392 кал1моль соответственно. [c.590]
Число функциональных групп может быть различным моно-аминомонокарбоновые, диаминомонокарбоновые, моноаминоди-карбоновые аминокислоты и т. д. По строению боковых цепей (полярности, заряженности) аминокислоты группируются на неполярные (гидрофобные), полярные (гидрофильные), но не за- [c.9]
Аминокислоты Википедия
Аминокисло́ты (аминокарбо́новые кисло́ты; АМК) — органические соединения, в молекуле которых одновременно содержатся карбоксильные и аминные группы. Основные химические элементы аминокислот — это углерод (C), водород (H), кислород (O) и азот (N), хотя другие элементы также встречаются в радикале определенных аминокислот. Известны около 500 встречающихся в природе аминокислот (хотя только 20 используются в генетическом коде).
[1]
Аминокислоты могут рассматриваться как производные карбоновых кислот, в которых один или несколько атомов водорода заменены на аминогруппы.
История
Большинство из около 500 известных аминокислот были открыты после 1953 года, в том числе во время поиска новых антибиотиков в среде микроорганизмов, грибов, семян, растений, фруктов и жидкостях животных. Примерно 240 из них встречаются в природе в свободном виде, а остальные только как промежуточные элементы обмена веществ[1].
Открытие аминокислот в составе белков
[2]
Аминокислота | Аббревиатура | Год | Источник | Впервые выделен[3] |
---|---|---|---|---|
Глицин | Gly, G | 1820 | Желатин | А. Браконно |
Лейцин | Leu, L | 1820 | Мышечные волокна | А. Браконно |
Тирозин | Tyr, Y | 1848 | Казеин | Ю. фон Либих |
Серин | Ser, S | 1865 | Шёлк | Э. Крамер |
Глутаминовая кислота | Glu, E | 1866 | Растительные белки | Г. Риттхаузен[de] |
Глутамин | Gln, Q | 1877 | Пшеничная мука | Э. Шулце[4] |
Аспарагиновая кислота | Asp, D | 1868 | Конглутин, легумин (ростки спаржи) | Г. Риттхаузен[en] |
Аспарагин | Asn, N | 1806 | Сок спаржи | Л.-Н. Воклен и П. Ж. Робике |
Фенилаланин | Phe, F | 1881 | Ростки люпина | Э. Шульце[4], Й. Барбьери |
Аланин | Ala, A | 1888 | Фиброин шёлка | А. Штреккер, Т. Вейль |
Лизин | Lys, K | 1889 | Казеин | Э. Дрексель |
Аргинин | Arg, R | 1895 | Вещество рога | С. Гедин |
Гистидин | His, H | 1896 | Стурин, гистоны | А. Коссель[5], С. Гедин |
Цистеин | Cys, C | 1899 | Вещество рога | К. Мёрнер |
Валин | Val, V | 1901 | Казеин | Э. Фишер |
Пролин | Pro, P | 1901 | Казеин | Э. Фишер |
Гидроксипролин | Hyp, hP | 1902 | Желатин | Э. Фишер |
Триптофан | Trp, W | 1902 | Казеин | Ф. Хопкинс, Д. Кол |
Изолейцин | Ile, I | 1904 | Фибрин | Ф. Эрлих |
Метионин | Met, M | 1922 | Казеин | Д. Мёллер |
Треонин | Thr, T | 1925 | Белки овса | С. Шрайвер и другие |
Гидроксилизин | Hyl, hK | 1925 | Белки рыб | С. Шрайвер и другие |
Жирным шрифтом выделены незаменимые аминокислоты.
Физические свойства
По физическим свойствам аминокислоты резко отличаются от соответствующих кислот и оснований. Все они кристаллические вещества, лучше растворяются в воде, чем в органических растворителях, имеют достаточно высокие температуры плавления; многие из них имеют сладкий вкус. Эти свойства отчётливо указывают на солеобразный характер этих соединений. Особенности физических и химических свойств аминокислот обусловлены их строением — присутствием одновременно двух противоположных по свойствам функциональных групп: кислотной и основной.
Общие химические свойства
Все аминокислоты — амфотерные соединения, они могут проявлять как кислотные свойства, обусловленные наличием в их молекулах карбоксильной группы —COOH, так и основные свойства, обусловленные аминогруппой —NH2. Аминокислоты взаимодействуют с кислотами и щелочами:
- NH2 —CH2 —COOH + HCl → HCl • NH2 —CH2 —COOH (Хлороводородная соль глицина)
- NH2 —CH2 —COOH + NaOH → H2O + NH2 —CH2 —COONa (натриевая соль глицина)
Растворы аминокислот в воде благодаря этому обладают свойствами буферных растворов, то есть находятся в состоянии внутренних солей.
- NH2 —CH2COOH N+H3 —CH2COO—
Аминокислоты обычно могут вступать во все реакции, характерные для карбоновых кислот и аминов.
Этерификация:
- NH2 —CH2 —COOH + CH3OH → H2O + NH2 —CH2 —COOCH3 (метиловый эфир глицина)
Важной особенностью аминокислот является их способность к поликонденсации, приводящей к образованию полиамидов, в том числе пептидов, белков, нейлона, капрона.
Реакция образования пептидов:
- HOOC —CH2 —NH —H + HOOC —CH2 —NH2→ HOOC —CH2 —NH —CO —CH2 —NH2 + H2O
Изоэлектрической точкой аминокислоты называют значение pH, при котором максимальная доля молекул аминокислоты обладает нулевым зарядом. При таком pH аминокислота наименее подвижна в электрическом поле, и данное свойство можно использовать для разделения аминокислот, а также белков и пептидов.
Цвиттер-ионом называют молекулу аминокислоты, в которой аминогруппа представлена в виде -NH3+, а карбоксигруппа — в виде -COO−. Такая молекула обладает значительным дипольным моментом при нулевом суммарном заряде. Именно из таких молекул построены кристаллы большинства аминокислот.
Некоторые аминокислоты имеют несколько аминогрупп и карбоксильных групп. Для этих аминокислот трудно говорить о каком-то конкретном цвиттер-ионе.
Получение
Большинство аминокислот можно получить в ходе гидролиза белков или как результат химических реакций:
- CH3COOH + Cl2 + (катализатор) → CH2ClCOOH + HCl; CH2ClCOOH + 2NH3→ NH2 —CH2COOH + NH4Cl
Все входящие в состав живых организмов α-аминокислоты, кроме глицина, содержат асимметрический атом углерода (треонин и изолейцин содержат два асимметрических атома) и обладают оптической активностью. Почти все встречающиеся в природе α-аминокислоты имеют L-конфигурацию, и лишь L-аминокислоты включаются в состав белка, синтезируемых на рибосомах.
D-Аминокислоты в живых организмах
Аспарагиновые остатки в метаболически неактивных структурных белках претерпевают медленную самопроизвольную неферментативную рацемизацию: в белках дентина и эмали зубов L-аспартат переходит в D-форму со скоростью ~0,1 % в год[6], что может быть использовано для определения возраста млекопитающих. Рацемизация аспартата также отмечена при старении коллагена; предполагается, что такая рацемизация специфична для аспарагиновой кислоты и протекает за счёт образования сукцинимидного кольца при внутримолекулярном ацилировании атома азота пептидной связи свободной карбоксильной группой аспарагиновой кислоты[7].
С развитием следового аминокислотного анализа D-аминокислоты были обнаружены сначала в составе клеточных стенок некоторых бактерий (1966), а затем и в тканях высших организмов[8]. Так, D-аспартат и D-метионин предположительно являются нейромедиаторами у млекопитающих[9].
В состав некоторых пептидов входят D-аминокислоты, образующиеся при посттрансляционной модификации. Например, D-метионин и D-аланин входят в состав опиоидных гептапептидов кожи южноамериканских амфибий филломедуз (дерморфина, дермэнкефалина и делторфинов). Наличие D-аминокислот определяет высокую биологическую активность этих пептидов как анальгетиков.
Сходным образом образуются пептидные антибиотики бактериального происхождения, действующие против грамположительных бактерий — низин, субтилин и эпидермин[10].
Гораздо чаще D-аминокислоты входят в состав пептидов и их производных, образующихся путём нерибосомного синтеза в клетках грибов и бактерий. Видимо, в этом случае исходным материалом для синтеза служат также L-аминокислоты, которые изомеризуются одной из субъединиц ферментного комплекса, осуществляющего синтез пептида.
Протеиногенные аминокислоты
В процессе биосинтеза белка в полипептидную цепь включаются 20 α-аминокислот, кодируемых генетическим кодом. Помимо этих аминокислот, называемых протеиногенными, или стандартными, в некоторых белках присутствуют специфические нестандартные аминокислоты, возникающие из стандартных в процессе посттрансляционных модификаций. В последнее время к протеиногенным аминокислотам иногда причисляют трансляционно включаемые селеноцистеин (Sec, U) и пирролизин (Pyl, O)[11][12]. Это так называемые 21-я и 22-я аминокислоты[13].
Вопрос, почему именно эти 20 аминокислот стали «избранными», остаётся нерешённым[14]. Не совсем ясно, чем эти аминокислоты оказались предпочтительнее других похожих. Например, ключевым промежуточным метаболитом пути биосинтеза треонина, изолейцина и метионина является α-аминокислота гомосерин. Очевидно, что гомосерин — очень древний метаболит, но для треонина, изолейцина и метионина существуют аминоацил-тРНК-синтетазы, тРНК, а для гомосерина — нет.
Структурные формулы 20 протеиногенных аминокислот обычно приводят в виде так называемой таблицы протеиногенных аминокислот:
Классификация
Аминокислота | 3-буквы[15] | 1-буква[15] | аминокислот | мнемоническое правило[16] | Полярность[17] | радикалу | Mr | Vw (Å3) | pI | шкала гидрофобности[18] | частота в белках (%)[19] |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Глицин | Gly | G | GGU, GGC, GGA, GGG | Glycine | Неполярные | Алифатические | 75,067 | 48 | 6,06 | −0,4 | 7,03 |
Аланин | Ala | A | GCU, GCC, GCA, GCG | Alanine | Неполярные | Алифатические | 89,094 | 67 | 6,01 | 1,8 | 8,76 |
Валин | Val | V | GUU, GUC, GUA, GUG | Valine | Неполярные | Алифатические | 117,148 | 105 | 6,00 | 4,2 | 6,73 |
Изолейцин | Ile | I | AUU, AUC, AUA | Isoleucine | Неполярные | Алифатические | 131,175 | 124 | 6,05 | 4,5 | 5,49 |
Лейцин | Leu | L | UUA, UUG, CUU, CUC, CUA, CUG | Leucine | Неполярные | Алифатические | 131,175 | 124 | 6,01 | 3,8 | 9,68 |
Пролин | Pro | P | CCU, CCC, CCA, CCG | Proline | Неполярные | Гетероциклические | 115.132 | 90 | 6,30 | −1,6 | 5,02 |
Серин | Ser | S | UCU, UCC, UCA, UCG, AGU, AGC | Serine | Полярные | Оксимоноаминокарбоновые | 105,093 | 73 | 5,68 | −0,8 | 7,14 |
Треонин | Thr | T | ACU, ACC, ACA, ACG | Threonine | Полярные | Оксимоноаминокарбоновые | 119,119 | 93 | 5,60 | −0,7 | 5,53 |
Цистеин | Cys | C | UGU, UGC | Cysteine | Полярные | Серосодержащие | 121,154 | 86 | 5,05 | 2,5 | 1,38 |
Метионин | Met | M | AUG | Methionine | Неполярные | Серосодержащие | 149,208 | 124 | 5,74 | 1,9 | 2,32 |
Аспарагиновая кислота | Asp | D | GAU, GAC | asparDic acid | Полярные заряженные отрицательно | заряженные отрицательно | 133,104 | 91 | 2,85 | −3,5 | 5,49 |
Аспарагин | Asn | N | AAU, AAC | asparagiNe | Полярные | Амиды | 132,119 | 96 | 5,41 | −3,5 | 3,93 |
Глутаминовая кислота | Glu | E | GAA, GAG | gluEtamic acid | Полярные заряженные отрицательно | заряженные отрицательно | 147,131 | 109 | 3,15 | −3,5 | 6,32 |
Глутамин | Gln | Q | CAA, CAG | Q-tamine | Полярные | Амиды | 146,146 | 114 | 5,65 | −3,5 | 3,9 |
Лизин | Lys | K | AAA, AAG | before L | Полярные | заряженные положительно | 146,189 | 135 | 9,60 | −3,9 | 5,19 |
Аргинин | Arg | R | CGU, CGC, CGA, CGG, AGA, AGG | aRginine | Полярные | заряженные положительно | 174.203 | 148 | 10,76 | −4,5 | 5,78 |
Гистидин | His | H | CAU, CAC | Histidine | Полярные заряженные положительно | Гетероциклические | 155,156 | 118 | 7,60 | −3,2 | 2,26 |
Фенилаланин | Phe | F | UUU, UUC | Fenylalanine | Неполярные | Ароматические | 165,192 | 135 | 5,49 | 2,8 | 3,87 |
Тирозин | Tyr | Y | UAU, UAC | tYrosine | Полярные | Ароматические | 181,191 | 141 | 5,64 | −1,3 | 2,91 |
Триптофан | Trp | W | UGG | tWo rings | Неполярные | Ароматические, Гетероциклические | 204,228 | 163 | 5,89 | −0,9 | 6,73 |
По радикалу
- Неполярные: глицин, аланин, валин, изолейцин, лейцин, пролин
- Полярные незаряженные (заряды скомпенсированы) при pH=7: серин, треонин, цистеин, метионин, аспарагин, глутамин
- Ароматические: фенилаланин, триптофан, тирозин
- Полярные заряженные отрицательно при pH=7: аспартат, глутамат
- Полярные заряженные положительно при pH=7: лизин, аргинин, гистидин[17]
По функциональным группам
- Алифатические
- Моноаминомонокарбоновые: глицин, аланин, валин, изолейцин, лейцин
- Оксимоноаминокарбоновые: серин, треонин
- Моноаминодикарбоновые: аспартат, глутамат, за счёт второй карбоксильной группы несут в растворе отрицательный заряд
- Амиды моноаминодикарбоновых: аспарагин, глутамин
- Диаминомонокарбоновые: лизин, аргинин, несут в растворе положительный заряд
- Серосодержащие: цистеин, метионин
- Ароматические: фенилаланин, тирозин, триптофан,
- Гетероциклические: триптофан, гистидин, пролин
- Иминокислоты: пролин
По классам аминоацил-тРНК-синтетаз
- Класс I: валин, изолейцин, лейцин, цистеин, метионин, глутамат, глутамин, аргинин, тирозин, триптофан
- Класс II: глицин, аланин, пролин, серин, треонин, аспартат, аспарагин, гистидин, фенилаланин
Для аминокислоты лизин существуют аминоацил-тРНК-синтетазы обоих классов.
По путям биосинтеза
Пути биосинтеза протеиногенных аминокислот разноплановы. Одна и та же аминокислота может образовываться разными путями. К тому же совершенно различные пути могут иметь очень похожие этапы. Тем не менее, имеют место и оправданы попытки классифицировать аминокислоты по путям их биосинтеза. Существует представление о следующих биосинтетических семействах аминокислот: аспартата, глутамата, серина, пирувата и пентоз. Не всегда конкретную аминокислоту можно однозначно отнести к определённому семейству; делаются поправки для конкретных организмов и учитывая преобладающий путь. По семействам аминокислоты обычно распределяют следующим образом:
- Семейство аспартата: аспартат, аспарагин, треонин, изолейцин, метионин, лизин.
- Семейство глутамата: глутамат, глутамин, аргинин, пролин.
- Семейство пирувата: аланин, валин, лейцин.
- Семейство серина: серин, цистеин, глицин.
- Семейство пентоз: гистидин, фенилаланин, тирозин, триптофан.
Фенилаланин, тирозин, триптофан иногда выделяют в семейство шикимата.
По способности организма синтезировать из предшественников
- Незаменимые
- Для большинства животных и человека незаменимыми аминокислотами являются: валин, изолейцин, лейцин, треонин, метионин, лизин, фенилаланин, триптофан.
- Заменимые
- Для большинства животных и человека заменимыми аминокислотами являются: глицин, аланин, пролин, серин, цистеин, аспартат, аспарагин, глутамат, глутамин, тирозин.
Классификация аминокислот на заменимые и незаменимые не лишена недостатков. К примеру, тирозин является заменимой аминокислотой только при условии достаточного поступления фенилаланина. Для больных фенилкетонурией тирозин становится незаменимой аминокислотой. Аргинин синтезируется в организме человека и считается заменимой аминокислотой, но в связи с некоторыми особенностями его метаболизма при определённых физиологических состояниях организма может быть приравнен к незаменимым. Гистидин также синтезируется в организме человека, но не всегда в достаточных количествах, потому должен поступать с пищей.
По характеру катаболизма у животных
Биодеградация аминокислот может идти разными путями.
По характеру продуктов катаболизма у животных протеиногенные аминокислоты делят на три группы:
Аминокислоты:
- Глюкогенные: глицин, аланин, валин, пролин, серин, треонин, цистеин, метионин, аспартат, аспарагин, глутамат, глутамин, аргинин, гистидин.
- Кетогенные: лейцин, лизин.
- Глюко-кетогенные (смешанные): изолейцин, фенилаланин, тирозин, триптофан.
«Миллеровские» аминокислоты
«Миллеровские» аминокислоты — обобщенное название аминокислот, получающихся в условиях, близких к эксперименту Стенли Л. Миллера 1953 года. Установлено образование в виде рацемата множества различных аминокислот, в том числе: глицин, аланин, валин, изолейцин, лейцин, пролин, серин, треонин, аспартат, глутамат
Родственные соединения
В медицине ряд веществ, способных выполнять некоторые биологические функции аминокислот, также (хотя и не совсем верно) называют аминокислотами:
Применение
Важной особенностью аминокислот является их способность к поликонденсации, приводящей к образованию полиамидов, в том числе пептидов, белков, нейлона, капрона, энанта[20].
Аминокислоты входят в состав спортивного питания и комбикорма. Аминокислоты применяются в пищевой промышленности в качестве вкусовых добавок, например, натриевая соль глутаминовой кислоты[21].
См. также
Примечания
- ↑ 1 2 Wagner I., Musso H. New Naturally Occurring Amino Acids (нем.) // Angewandte Chemie International Edition in English : magazin. — 1983. — November (Bd. 22, Nr. 11). — S. 816—828. — doi:10.1002/anie.198308161.
- ↑ S. Hansen. Entdeckung der Aminosäuren. — 2015.
- ↑ Овчинников Ю. А. «Биоорганическая химия» М:Просвещение, 1987. — 815 с., стр. 25.
- ↑ 1 2 Ernst Schulze (chemist) (англ.) // Wikipedia. — 2019-02-14.
- ↑ Карпов В. Л. От чего зависит судьба гена (рус.) // Природа. — Наука, 2005. — № 3. — С. 34—43.
- ↑ Helfman, P M; J L Bada. Aspartic acid racemization in tooth enamel from living humans (англ.) // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America : journal. — 1975. — Vol. 72, no. 8. — P. 2891—2894.
- ↑
CLOOS P; FLEDELIUS C. Collagen fragments in urine derived from bone resorption are highly racemized and isomerized: a biological clock of protein aging with clinical potential (неопр.) (1 февраля 2000). Дата обращения: 5 сентября 2011. Архивировано 2 февраля 2012 года. - ↑ J. van Heijenoort. Formation of the glycan chains in the synthesis of bacterial peptidoglycan // Glycobiology. — 2001-3. — Т. 11, вып. 3. — С. 25R—36R. — ISSN 0959-6658.
- ↑ Herman Wolosker, Elena Dumin, Livia Balan, Veronika N. Foltyn. D-amino acids in the brain: D-serine in neurotransmission and neurodegeneration // The FEBS journal. — 2008-7. — Т. 275, вып. 14. — С. 3514—3526. — ISSN 1742-464X. — doi:10.1111/j.1742-4658.2008.06515.x.
- ↑ H. Brötz, M. Josten, I. Wiedemann, U. Schneider, F. Götz. Role of lipid-bound peptidoglycan precursors in the formation of pores by nisin, epidermin and other lantibiotics // Molecular Microbiology. — 1998-10. — Т. 30, вып. 2. — С. 317—327. — ISSN 0950-382X.
- ↑ Linda Johansson, Guro Gafvelin, Elias S.J. Arnér. Selenocysteine in proteins—properties and biotechnological use // Biochimica et Biophysica Acta (BBA) — General Subjects. — 2005-10. — Т. 1726, вып. 1. — С. 1—13. — ISSN 0304-4165. — doi:10.1016/j.bbagen.2005.05.010.
- ↑ Joseph A. Krzycki. The direct genetic encoding of pyrrolysine // Current Opinion in Microbiology. — 2005-12. — Т. 8, вып. 6. — С. 706—712. — ISSN 1369-5274. — doi:10.1016/j.mib.2005.10.009.
- ↑ Alexandre Ambrogelly, Sotiria Palioura, Dieter Söll. Natural expansion of the genetic code // Nature Chemical Biology. — 2007-1. — Т. 3, вып. 1. — С. 29—35. — ISSN 1552-4450. — doi:10.1038/nchembio847.
- ↑ Andrei S. Rodin, Eörs Szathmáry, Sergei N. Rodin. On origin of genetic code and tRNA before translation // Biology Direct. — 2011-02-22. — Т. 6. — С. 14. — ISSN 1745-6150. — doi:10.1186/1745-6150-6-14.
- ↑ 1 2 Cooper, Geoffrey M. The cell : a molecular approach. — 3rd ed. — Washington, D.C.: ASM Press, 2004. — xx, 713 pages с. — ISBN 0878932143, 9780878932146, 0878930760, 9780878930760.
- ↑ Р. Б. Соловьев, учитель биологии. Несколько мнемонических правил
- ↑ 1 2 Березов Т.Т., Коровкин Б.Ф. Классификация аминокислот // Биологическая химия. — 3-е изд., перераб. и доп.. — М.: Медицина, 1998. — 704 с. — ISBN 5-225-02709-1.
- ↑ J. Kyte, R. F. Doolittle. A simple method for displaying the hydropathic character of a protein // Journal of Molecular Biology. — 1982-05-05. — Т. 157, вып. 1. — С. 105—132. — ISSN 0022-2836.
- ↑ Lukasz P. Kozlowski. Proteome-pI: proteome isoelectric point database // Nucleic Acids Research. — 2017-01-04. — Т. 45, вып. D1. — С. D1112—D1116. — ISSN 1362-4962. — doi:10.1093/nar/gkw978.
- ↑ Fumio Sanda, Takeshi Endo. Syntheses and functions of polymers based on amino acids (англ.) // Macromolecular Chemistry and Physics. — Vol. 200, iss. 12. — ISSN 1521-3935. — doi:10.1002/(sici)1521-3935(19991201)200:12%3C2651::aid-macp2651%3E3.0.co;2-p.
- ↑ Садовникова М. С., Беликов В. М. Пути применения аминокислот в промышленности. //Успехи химии. 1978. Т. 47. Вып. 2. С. 357―383.
Литература
- Эксперименты Миллера-Юри и обсуждения:
- Miller S. L. Production of amino acids under possible primitive earth conditions. Science, v. 117, May 15, 1953
- Miller S. L. and H. C. Urey. Organic compound synthesis on the primitive earth. Science, v. 130, July 31, 1959
- Miller Stanley L. and Leslie E. Orgel. The origins of life on the earth. Englewood Cliffs, NJ, Prentice-Hall, 1974.
- Общая биология. Учебник для 9 — 10 классов средней школы. Под ред. Ю. И. Полянского. Изд. 17-е, перераб. — М.: Просвещение, 1987. — 288с.
- Аминокислоты, пептиды, белки. Под ред. Ю. В. Митина
Ссылки
Некоторые внешние ссылки в этой статье ведут на сайты, занесённые в спам-лист.Эти сайты могут нарушать авторские права, быть признаны неавторитетными источниками или по другим причинам быть запрещены в Википедии. Редакторам следует заменить такие ссылки ссылками на соответствующие правилам сайты или библиографическими ссылками на печатные источники либо удалить их (возможно, вместе с подтверждаемым ими содержимым). Список проблемных ссылок
|
Исследование продуктов распада аминокислот — Страница 2
Страница 2 из 3
Для опыта были избраны семь аминокислот, находящихся в винах в достаточно больших количествах, отличных по строению и физико- химическим свойствам. Из группы моноаминокарбоновых аминокислот исследовали валин и лейцин, из диаминомонокарбоновых — лизин, из моноаминодикарбоновых — глутаминовую кислоту, из оксиаминокислот — серин, из гетероциклических — триптофан, и серусодержащих — цистин.
Длительное хранение (630 суток) 0,05М. водно-спиртовых растворив аминокислот, содержащих 20%об. этилового спирта при pH 3,5, (называет понижение концентрации α-аминного азота, заметное даже при хранении в холодильнике (0—5° С).
В процессе выдержки при повышенной температуре (55—57° С в течение 275 суток и 20—25°С — 355 суток) потери аминного азота в растворе валина возросли в 7 раз, триптофана — в 5,6 раз, глутаминовой кислоты и серина — в 5 раз. Добавление глюкозы интенсифицировало процесс распада аминокислот как на холоду, так и при нагревании. Дополнительное понижение концентрации аминокислоты в присутствии танина наблюдается у серина и в меньшей степени в растворах валина и лейцина. У других аминокислот действие танина мало заметно. Сильно понижается концентрация глутаминовой кислоты в чистых растворах (не содержащих глюкозу или танин) вследствие се химической неустойчивости (рис. 1).
Степень окрашивания растворов обусловливалась природой аминокислоты и присутствием глюкозы или танина. В растворах чистых аминокислот (не содержащих глюкозу или танин) самая интенсивная окраска наблюдалась у цистина.
Более слабо окрашены были растворы лизина и триптофана. Растворы серина, валина, глутаминовой кислоты и лейцина оставались бесцветными. В присутствии глюкозы неокрашенным оставался только раствор глутаминовой кислоты. С танином все исследуемые нами аминокислоты образовывали интенсивную коричневую окраску. Раствор чистого танина оставался бесцветным, но в нем выпадал бурый осадок. Параллельно с окраской растворы приобретают способность флуоресцировать в ультрафиолетовом свете. Неокрашенные или слабо окрашенные растворы обладают, как правило, голубой или молочно-белой флуоресценцией, которая по мере побурения растворов становится желтой и интенсивно желтой.
Все варианты растворов, подвергавшиеся нагреву, отличались интенсивным своеобразным запахом (табл. 1). Растворы, выдержанные в холодильнике, имели более слабый аромат, отличающийся от аромата образцов, выдержанных при более высокой температуре, не только интенсивностью, но и своей природой. Как правило, они были менее интересными и разнообразными.
Таблица 1. Характеристика аромата водно-спиртовых растворов аминокислот (выдержка 275 суток при температуре 55—57 °C)
В результате распада отдельных аминокислот в растворе обнаружены вещества с карбонильными группами и аммиак. Их выходы (табл. 2) оказались ниже рассчитанных по понижению концентрации аминного азота согласно схеме реакции окислительного дезаминирования, предполагающей молярное соотношение между исходной аминокислотой и концентрацией образовавшегося альдегида и аммиака, равным 1 : 1.
Таблица 2.
Содержание карбонильных групп и азота аммиака (в моль/л 10-4) в растворах аминокислот (выдержка 275 суток при температуре 55—57о С и 355 суток при 15—20 С)
Хроматографирование 2,4-динитрофенил гидразонов, осажденных из реакционной смеси, показало, что карбонильные соединения, образующиеся в растворе аминокислоты, неоднородны, а состоят из нескольких компонентов (рис. 2).
В растворах различных аминокислот обнаружены гидразоны с одинаковым Rf, принадлежащие, по-видимому, к одинаковым по строению альдегидам. В самых больших количествах образуется уксусный (или муравьиный) альдегид, пятно которого обнаружено на всех хроматограммах.
Опыты по исследованию продуктов дезаминирования отдельных аминокислот позволили установить следующее. Окислительный распад аминокислот в водно-спиртовых растворах в условиях длительной выдержки может идти при низких температурах (в пределах 0—5о С). С повышением температуры до 55—57° С скорость реакции разложения увеличивается в 2—6 раз. Повышение температуры вызывает по только количественные, но и качественные изменения в ходе дезаминирования, что можно заметить ио изменению интенсивности и природы аромата исследуемых нами растворов аминокислот. Сложность и разнообразие запахов, возникающих в растворах, выдерживаемых при повышенных температурах, свидетельствуют о появлении новых химических соединений, вероятно полимеров — продуктов распада углеродного радикала аминокислот. Усиление процесса деградации аминокислоты в присутствии глюкозы вызвано возникновением сахароаминных реакций, ведущих к образованию темно окрашенных веществ типа меланоидинов. Глубина этого процесса зависит от природы аминокислоты, что можно заметить по интенсивности окраски растворов разных аминокислот. Понижение концентрации аминокислоты, вызванное присутствием глюкозы, не всегда коррелирует с интенсивностью появившейся окраски (пример — валин). По-видимому, в этих случаях реакция останавливается преимущественно на I стадии меланоидинообразования — появлении N-замещенных глюкозиламинов, не вызывающих окраски. При взаимодействии с глутаминовой кислотой сахароаминная реакция не идет дальше образования Ν-замсщенных глюкозиламинов (раствор остается бесцветным).
Интенсификация процесса распада аминокислоты наблюдается и в присутствии танина. Известно, что танины активно реагируют с альдегидами и другими карбонильными соединениями, образующимися в результате деградации аминокислот [2].
Усиление процесса распада может быть вызвано постоянным нарушением состояния равновесия между аминокислотами и продуктами их распада вследствие связывания их танином. Не исключена также возможность влияния танинов как сильных редуктонов ароматического типа, вызывающих разложение аминокислоты по схеме Штрекера. В пользу этой гипотезы говорит и более высокая концентрация аммиака в опытах с танином. Немаловажное значение в реакциях, происходящих в присутствии танина, имеет и природа аминокислоты. Так. процесс понижения концентрации аминокислот под влиянием танина в растворах серина и лейцина идет более интенсивно, чем вследствие сахаро-аминных реакций.
В растворах глутаминовой кислоты, не содержащих глюкозу или танин, концентрация понижается более сильно. Это можно объяснить легким разложением глутаминовой кислоты при нагревании, что в значительной мере маскирует процесс окислительного распада под влиянием танина и вследствие взаимодействия с глюкозой. Неустойчивость глутаминовой кислоты к нагреванию отмечалась нами [16] и другими авторами [25].
При распаде аминокислот образуются вещества с карбонильными группами. Их концентрация не достигает теоретического выхода, подсчитанного по убыли концентрации аминного азота согласно схеме реакции, указанной выше. Очевидно, это объясняется их высокой реакционной способностью. В условиях концентрации, применяемых в наших опытах, могут происходить процессы полимеризации или взаимодействия с другими продуктами реакции, присутствующими в растворе (аммиак, глюкоза, танины).
Важно отметить, что из растворов различных аминокислот выделены гидразоны одинаковых по строению альдегидов, в частности уксусный альдегид. Следовательно, при распаде аминокислоты преобладает процесс отщепления одинаковых радикалов СН3 — СН, гидроксилирование и последующее окисление которых ведет к образованию уксусного альдегида. Такое отщепление можно легко представить, исходя из строения молекулы аминокислот, которые можно рассматривать как производные α-аланина.
Кроме альдегидоз, общих для всех аминокислот, образуются также альдегиды, содержащие на один углеродный атом меньше, чем исходная аминокислота, как это предусматривает схема распада по Штрекеру. К ним относятся изовалерьяновый альдегид, обнаруженный в растворе лейцина, и изомасляный, найденный в растворе валина. Основой образующегося при выдержке аромата являются, вероятно, кроме альдегидов, образующихся по схеме Штрекера, гидроксильные и карбонильные производные органического радикала аминокислоты, дающие с 2,4-динитрофенилгидразином вещества типа озазонов. При хроматографировании гидразонов они образуют стартовое пятно. Общие для разных аминокислот карбонильные соединения участвуют в образовании букета как вещества, создающие фон аромата.
Колебания концентрации аммиака в растворе должны характеризовать, в известной мере, интенсивность реакций, проходящих по схеме Штрекера. Как видно из полученных результатов, концентрация аммиака в растворе намного ниже теоретического выхода. Поскольку образование аммиака вследствие дезаминирования является неизбежным, понижение его концентрации в растворе объясняется, по-видимому, вступлением его во вторичные реакции взаимодействия с продуктами распада аминокислот или веществами, присутствующими в растворе. Реакция с карбонильными соединениями, например, ведет к образованию альдегидаммиаков — продуктов полимеризации альдегидиминов. Последние могут образоваться из оксиаминов вследствие отщепления молекулы воды. Альдегидаммиаки образуют полимеры, не подвергающиеся щелочному гидролизу, вследствие чего азот аммиака в них не определяется. Возможно также прямое присоединение аминогруппы к карбонильному соединению с образованием аминов. На возможность подобной реакции указывают Гербст и Энгель [35]. Подвергая в присутствии пировиноградной кислоты окислительной деградации фенилаланин, эти авторы обнаружили в реакционной смеси аланин.
Более активное накопление аммиака в присутствии танинов зависит, как указывалось, от интенсификации процесса распада согласно реакции Штрекера.
Ошибка
Перейти на…
Перейти на…Форум дистанционного консультированияСистемные требования для ЭУМККарта ЭУМКЭлектронный журнал ФФУважаемые студенты! Каждую неделю кафедра будет открывать тесты для отработки студентами УСР лекций. ОБЯЗАТЕЛЬНО нужно отработать все тесты по лекциям. Каждая тема будет открыта только одну неделюВНИМАНИЕ!!! Тесты УСР лекций находятся в блоке контроля знаний. Отработка лекций влияет на рейтинг!Электронная почта кафедры органической химии: [email protected]Базовая программа по дисциплине органическая химияУчебная программаУчебный план дисциплиныПОЛОЖЕНИЕ О РЕЙТИНГОВОЙ СИСТЕМЕ ОЦЕНКИ УСПЕВАЕМОСТИ СТУДЕНТОВ (РЕЙТИНГ-ПЛАН) ПРИ ИЗУЧЕНИИ ДИСЦИПЛИНЫ «ОРГАНИЧЕСКАЯ ХИМИЯ» ПО КАФЕДРЕ ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ НА ФАРМАЦЕВТИЧЕСКОМ ФАКУЛЬТЕТЕ ВГМУРейтинг студентов 2-го курса фармацевтического факультета по предмету «Органическая химия» по итогам 3 модуля 2020-2021 уч. г.Учебно-тематический план дисциплиныКАЛЕНДАРНЫЙ ПЛАН ЛЕКЦИЙ И УПРАВЛЯЕМОЙ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ (УСР) ПО ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ НА 2 КУРСЕ ФАРМАЦЕВТИЧЕСКОГО ФАКУЛЬТЕТА И ФПИГ (фармация) В ВЕСЕННЕМ (IV) СЕМЕСТРЕ 2020-2021 уч.г.КАЛЕНДАРНЫЙ ПЛАН ЛАБОРАТОРНЫХ ЗАНЯТИЙ И УПРАВЛЯЕМОЙ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ (УСР) ПО ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ НА 2 КУРСЕ ФАРМАЦЕВТИЧЕСКОГО ФАКУЛЬТЕТА И ФПИГ (фармация) В ВЕСЕННЕМ (IV) СЕМЕСТРЕ 2020-2021 уч.г.РАСПИСАНИЕ ЛЕКЦИЙ И ЛАБОРАТОРНЫХ ЗАНЯТИЙ по органической химии для студентов 2 курса фармацевтического факультета и ФПИГ «Фармация» на весенний семестр 2020-2021 учебного годаГрафик проведения отработок пропущенных занятий и консультаций для студентов 2 курса фармацевтического факультета в весеннем семестре 2020-2021 учебного годаГрафик ежедневных отработок на кафедре органической химии с 08.02.2021 по 26.02.2021ПОЯСНИТЕЛЬНАЯ ЗАПИСКАКурс лекций (1 часть — осенний семестр)ТЕМА 2. Функциональные производные карбоновых кислот.ТЕМА 5. Функциональные производные угольной кислоты.ТЕМА 1. Карбоновые кислоты.TEMA 2 Гетерофункциональность как причина химических особенностей соединений. Реакционная способность аминокислот (пептиды и белки), гидрокси-, фенол- и оксокарбоновых кислот (часть 2).TEMA 3 Углеводы. Строение, таутомерия моносахаридов.TEMA 4 Реакционная способность моносахаридов. Гликозиды.TEMA 5 Олиго- и полисахариды строение, реакционная способность.TEMA 6 Гетероциклические соединения. Строение и реакционная способность пятичленных ароматических гетероциклов. УСРТест Гетероциклические соединения. Строение и реакционная способность пятичленных ароматических гетероцикловTEMA 7 Строение и реакционная способность шестичленных гетероциклов.TEMA 8 Конденсированные гетероциклические соединения. Алкалоиды. УСРТест Конденсированные гетероциклические соединения. Алкалоиды. УСРУчебные вопросы к теме «Конденсированные гетероциклы. Алкалоиды»ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОКОНТРОЛЯ ПОДГОТОВКИ ПО ТЕМЕ «КОНДЕНСИРОВАННЫЕ ГЕТЕРОЦИКЛЫ. АЛКАЛОИДЫ»Тренировочные тесты. Гетероциклические соединения. АлкалоидыTEMA 9 Основы строения и реакционной способности нуклеозидов и нуклеотидов. УСРНуклеозиды. Нуклеотиды. Нуклеиновые кислотыТест Основы строения и реакционной способности нуклеозидов и нуклеотидов. УСРНуклеозиды, нуклеотиды. УЧЕБНЫЕ ВОПРОСЫНуклеозиды, нуклеотиды. ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОКОНТРОЛЯ ПОДГОТОВКИ:Тренировочные тесты. Нуклеотиды. Нуклеозиды. Нуклеиновые кислотыTEMA 10 Липиды. Основы строения и реакционной способности омыляемых липидов. УСРОмыляемые липиды. УЧЕБНЫЕ ВОПРОСЫТренировочные тесты. ЛипидыTEMA 11 Изопреноиды. Терпены и терпеноиды. УСРТерпены и терпеноиды. УЧЕБНЫЕ ВОПРОСЫТренировочные тесты. Терпены. СтероидыTEMA 12 Стероиды, основы строения, типичная реакционная способность. УСРСтероиды. УЧЕБНЫЕ ВОПРОСЫ СТЕРОИДЫ. ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОКОНТРОЛЯ ПОДГОТОВКИЗАНЯТИЕ № 14 ОРГАНИЧЕСКИЙ СИНТЕЗ. ЭКСТРАКЦИЯ.Синтез. Экстракция.УЧЕБНЫЕ ВОПРОСЫДомашнее задание. ЗАНЯТИЕ № 15. КРИСТАЛЛИЗАЦИЯ. ВОЗГОНКА. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ТЕМПЕРАТУР ПЛАВЛЕНИЯ И КИПЕНИЯВопросы для подготовки к занятию и вопросы домашнего задания по теме. Очистка вещества методами кристаллизации и возгонки. Определение температур кипения и плавленияЗадачи. Очистка вещества методами кристаллизации и возгонки. Определение температур кипения и плавления.Очистка вещества методами кристаллизации и возгонки. Определение температур кипения и плавленияЗАНЯТИЕ № 16. ПЕРЕГОНКА. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПОКАЗАТЕЛЯ ПРЕЛОМЛЕНИЯ.КОНТРОЛЬНАЯ РАБОТА №1КОНТРОЛЬНАЯ РАБОТА №1 ситуационные задачиПлан оформления УИРСКОНТРОЛЬНАЯ РАБОТА №2 УИРС-1: список соединенийКОНТРОЛЬНАЯ РАБОТА №2: сводные вопросы и ситуационные задачиКонтрольная работа №3 Контрольная работа № 3Сводные вопросы к.р. № 4Программно-дидактические тестовые материалы — осенний семестр 1 частьПрограммно-дидактические тестовые материалы — осенний семестр 2 частьПрограммно-дидактические тестовые материалы — осенний семестр 3 частьПрограммно-дидактические тестовые материалы — весенний семестр Тестирование. УСР. (с объяснениями)ОБЪЕМ ЭКЗАМЕНАЭКЗАМЕНАЦИОННЫЕ ВОПРОСЫ ДЛЯ УСТНОГО СОБЕСЕДОВАНИЯ ПО ОРГАНИЧЕСКОЙ ХИМИИ УСТНОЕ СОБЕСЕДОВАНИЕПеречень практических навыков по органической химииПеречень знаний и уменийПеречень практических навыковМатериалы для экзамена по практическому навыку в 2018-2019 уч.г.СИТУАЦИОННЫЕ ЗАДАЧИМетодические материалы для подготовки к занятиям в осеннем семестре часть 1Методические материалы для подготовки к занятиям в осеннем семестре часть 2ЗАНЯТИЕ № 14 Амины. Диазосоединения.ЗАНЯТИЕ № 15 Амины. Диазосоединения.ЗАНЯТИЕ №17. Карбоновые кислотыЗАНЯТИЕ 18. Особенности строения и реакционная способность монофункциональных соединений.ЗАНЯТИЕ №1. Функциональные производные карбоновых кислот.Методические материалы для подготовки к занятиям в весеннем семестре часть 1Методические материалы для подготовки к занятиям в весеннем семестре часть 2Определение оптической активности глюкозыУСР в IV (весеннем) семестреТренировочное тестирование по органической химииТест «Гидрокси-, Фенол- и Оксокарбоновые кислоты»Тест «Углеводы. Моносахариды»Тест «Олиго- и Полисахариды»Тест «Шестичленные гетероциклы»Список рекомендуемой литературыСПРАВОЧНЫЕ РАЗДАТОЧНЫЕ МАТЕРИАЛЫСПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ, ИМЕЮЩЕЙСЯ В БИБЛИОТЕКЕ УО «ВГМУ»
Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.
Настройка вашего браузера для приема файлов cookie
Существует множество причин, по которым cookie не может быть установлен правильно. Ниже приведены наиболее частые причины:
- В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки своего браузера, чтобы он принимал файлы cookie, или чтобы спросить, хотите ли вы принимать файлы cookie.
- Ваш браузер спрашивает вас, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались.
Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, нажмите кнопку «Назад» и примите файлы cookie. - Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Если вы подозреваете это, попробуйте другой браузер.
- Дата на вашем компьютере в прошлом. Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г.,
браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы исправить это, установите правильное время и дату на своем компьютере. - Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie.
Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.
Почему этому сайту требуются файлы cookie?
Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу. Чтобы предоставить доступ без файлов cookie
потребует, чтобы сайт создавал новый сеанс для каждой посещаемой страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.
Что сохраняется в файле cookie?
Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в cookie; никакая другая информация не фиксируется.
Как правило, в файлах cookie может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта. Например, сайт
не может определить ваше имя электронной почты, пока вы не введете его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступа к
остальной части вашего компьютера, и только сайт, который создал файл cookie, может его прочитать.
Теоретическое исследование хирального перехода серина и роли воды, гидроксильного радикала и гидроксид-иона
Мы используем теорию функционала плотности из первых принципов и теорию молекулярных орбиталей ab initio , чтобы изучить процесс хирального перехода молекулы серина и исследовать роль воды, гидроксильного радикала и гидроксид-иона как катализатора во время процесса взаимного превращения. Идентифицированы два наиболее вероятных пути хирального перехода изолированного серина, в которых α-водород переносится с использованием атома N амино в качестве мостика, а не атома карбонила O.Эти два механизма хирального перехода включают трансформацию хиральных энантиомеров; другими словами, это энантиомеризация серина. Две стадии переноса протона с высокими энергетическими барьерами ~ 58,0 и 37,0 ккал моль -1 являются стадиями, ограничивающими скорость. Расчеты показывают, что вода может эффективно катализировать хиральный переход, способствуя эффективному переносу протонов, а самые высокие энергетические барьеры составляют ∼26,4 и 4,8 ккал моль -1 . Расчеты также предсказывают, что гидроксильный радикал может еще больше снизить энергетический барьер хирального перехода примерно до 12.6 и 5,3 ккал моль -1 за счет облегчения переноса протона. Напротив, гидроксильный радикал с большей вероятностью повредит серин, и это повреждение трудно исправить. Наконец, гидроксид-ион может дополнительно снизить барьеры для хирального перехода примерно до 5,5 и 4,5 ккал моль -1 , облегчая перенос протона. Насколько нам известно, это первый раз, когда была продемонстрирована важная роль воды, гидроксильного радикала и гидроксид-иона в хиральном переходе серина.Полученные данные позволяют по-новому взглянуть на механизм энантиомеризации серина на атомном уровне. Между тем, результаты показывают, что гидроксильный радикал может повредить серин, и это повреждение трудно исправить.
У вас есть доступ к этой статье
Подождите, пока мы загрузим ваш контент…
Что-то пошло не так. Попробуй снова?
Конверсия альдегидных меток серинового типа радикальным белком SAM AtsB из Methanosarcina mazei., ChemBioChem
Ферменты, генерирующие формилглицин, представляют собой удобный инструмент для сайт-специфической дериватизации белков.Их способность окислять остатки цистеина или серина в пределах определенной консенсусной последовательности до Cα-формилглицина (FGly) позволяет целенаправленно вводить уникальный химический элемент для различных реакций биоконъюгирования. В последние годы кислородзависимый фермент, генерирующий FGly, нашел широкое применение для функционализации белков и создания белковых конъюгатов. Тем не менее, система AtsB, генерирующая FGly, наряду с ее способностью преобразовывать необычные последовательности альдегидных меток, по большей части остается неиспользованной. Здесь демонстрируется способность AtsB из Methanosarcina mazei преобразовывать неклассические альдегидные метки SX (A / P) XR-типа и его потенциальное использование в химии биоконъюгирования.
中文 翻译 :
马氏 甲烷 八 叠 球菌 的 自由基 SAM 蛋白 AtsB 对 丝氨酸 型 醛 标签 的 转化。
产生 甲酰 甘氨酸 的 酶 为 位 点 特异性 衍生 化 了 方便 的 工具。 它们 将 的 共有 序列 中 的 半胱氨酸 或 丝氨酸 残 Cα- 甲 酰基 (FGly) 的 能力 允许 针对生物 缀 合 有 针对性 地 引入 独特 的 化学 手法。 近年来 , 依赖 氧气 的 FGly 酶 在 蛋白质 功能 化 和 蛋白质 的 产生 中 得到 了 广泛 的 应用 但是 FGly 生成 系统 AtsB 以及转换 异常 醛 标记 序列 的 功能 , 仍然 大部分 未被 使用。 在 本文 中 , 证明 叠 球菌 的 AtsB 能够 转化 SX (A / P) XR 型 非 经典 标签 的 能力 及其 在 生物共 轭 化学 中 的 潜在 用途。
Чувствительность белковых терапевтических средств к спонтанным химическим модификациям в результате реакций окисления, циклизации и элиминации
Эшбах Р., Амадо Р., Нойком Х. (1976) Образование дитирозиновых поперечных связей в белках путем окисления остатков тирозина.Biochim Biophys Acta 439: 292–301
CAS
PubMed
Google Scholar
Agon VV, Bubb WA, Wright A, Hawkins CL, Davies MJ (2006) Опосредованное сенсибилизатором фотоокисление остатков гистидина: доказательства образования реактивных пероксидов боковых цепей. Free Radic Biol Med 40: 698–710. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2005.09.039
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ajo D, Granozzi G, Tondello E, Delpra A (1980) Конформационная гибкость пептидов, содержащих альфа, бета-ненасыщенные аминокислотные остатки.1. Конформационный анализ N, -ацетил- N ‘-метиламидов дегидроаланина и N, -метилдегидроаланина. Биополимеры 19: 469–475. https://doi.org/10.1002/bip.1980.3601
CAS
Статья
Google Scholar
Алкок Л.Дж., Перкинс М.В., Чалкер Дж.М. (2018) Химические методы картирования окисления цистеина. Chem Soc Rev 47: 231–268. https://doi.org/10.1039/c7cs00607a
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Али Ф.Э., Барнем К.Дж., Барроу С.Дж., Сепарович Ф. (2004) Катализируемое металлами окисление остатков тирозина с помощью различных систем окисления меди / перекиси водорода.J Inorg Biochem 98: 173–184
CAS
PubMed
Google Scholar
Амано М., Кобаяши Н., Ябута М., Учияма С., Фукуи К. (2014) Обнаружение окисления гистидина в моноклональном антителе гамма-иммуноглобулина (IgG) 1. Anal Chem 86: 7536–7543. https://doi.org/10.1021/ac501300m
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ашраф С.М., Ахмад И., Лугемва Ф.К.Н. (1980) Кинетика и механизм окисления 1-фенилаланина перекисью водорода в присутствии сульфата железа в качестве катализатора.J Org Chem 45: 3202–3204. https://doi.org/10.1021/jo01304a012
CAS
Статья
Google Scholar
Aspee A, Lissi EA (2000) Кинетика и механизм хемилюминесценции, связанной со свободнорадикальным окислением аминокислот. Люминесценция 15: 273–282. https://doi.org/10.1002/1522-7243
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Aylin F, Konuklar S, Aviyente V (2003) Моделирование гидролиза сукцинимида: образование аспартата и обратимая изомеризация аспарагиновой кислоты через сукцинимид.Org Biomol Chem 1: 2290–2297
CAS
PubMed
Google Scholar
Baker MP, Reynolds HM, Lumicisi B, Bryson CJ (2010) Иммуногенность белковых терапевтических средств: ключевые причины, последствия и проблемы. Самостоятельное отсутствие себя 1: 314–322. https://doi.org/10.4161/self.1.4.13904
Артикул
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Bar-Or R, Rael LT, Bar-Or D (2008) Дегидроаланин, полученный из цистеина, представляет собой обычную посттрансляционную модификацию нечеловеческого сывороточного альбумина.Масс-спектр Rapid Commun. 22: 711–716. https://doi.org/10.1002/rcm.3421
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Bartelds GM et al (2011) Разработка антилекарственных антител против адалимумаба и связь с активностью заболевания и неудачей лечения во время длительного наблюдения. JAMA 305: 1460–1468. https://doi.org/10.1001/jama.2011.406
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Beck A, Wagner-Rousset E, Ayoub D, Van Dorsselaer A, Sanglier-Cianferani S (2013) Характеристика терапевтических антител и родственных продуктов.Anal Chem 85: 715-736. https://doi.org/10.1021/ac3032355
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Becker D, Swarts S, Champagne M, Sevilla MD (1988) Исследование электронно-спинового резонанса реакций тиильных радикалов глутатиона, цистеина и пеницилламина — конкурентное образование RSO . , R . , RSSR -. и RSS . . Int J Radiat Biol 53: 767–786. https: // doi.org / 10.1080 / 09553008814551121
CAS
Статья
Google Scholar
Берендт Р., Уайт П., Предложение J (2016) Достижения в твердофазном синтезе пептидов Fmoc. J Pept Sci 22: 4–27. https://doi.org/10.1002/psc.2836
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Бенассон Р.В., Лэнд Э.Дж., Траскотт Т.Г. (1983) Флэш-фотолиз и импульсный радиолиз: вклад в химию биологии и медицины.Pergamon Press, Оксфорд
Google Scholar
Bender NK, Heilig CE, Dröll B, Wohlgemuth J, Armbruster FP, Heilig B (2007) Иммуногенность, эффективность и побочные эффекты адалимумаба у пациентов с РА. Rheumatol Int. 27: 269–274. https://doi.org/10.1007/s00296-006-0183-7
CAS
Статья
Google Scholar
Бент Д.В., Хейон Э. (1975) Химия возбужденного состояния ароматических аминокислот и родственных пептидов.2. Фенилаланин. J Am Chem Soc 97: 2606–2612. https://doi.org/10.1021/ja00843a003
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Berkowitz SA, Engen JR, Mazzeo JR, Jones GB (2012) Аналитические инструменты для характеристики биофармацевтических препаратов и их значение для биоподобных препаратов. Nat Rev Drug Discov 11: 527–540. https://doi.org/10.1038/nrd3746
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Bertolotti-Ciarlet A et al (2009) Влияние окисления метионина на связывание человеческого IgG1 с рецепторами Fc Rn и Fc гамма.Мол Иммунол 46: 1878–1882. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2009.02.002
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Bielski BHJ, Cabelli DE, Arudi RL, Ross AB (1985) Реакционная способность радикалов HO 2 / O 2 — радикалов в водном растворе. J Phys Chem Ref Data 14: 1041–1100. https://doi.org/10.1063/1.555739
CAS
Статья
Google Scholar
Bloom JW, Madanat MS, Marriott D, Wong T, Chan SY (1997) Внутрицепочечная дисульфидная связь в центральной шарнирной области человеческого IgG4.Protein Sci 6: 407–415. https://doi.org/10.1002/pro.5560060217
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Bongers J et al (2000) Валидация метода пептидного картирования терапевтического моноклонального антитела: что мы могли бы узнать о методе, который мы использовали 100 раз? J Pharm Biomed Anal 21: 1099–1128. https://doi.org/10.1016/s0731-7085(99)00181-8
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Bonifacic M, Hug GL, Schöneich C (2000) Кинетика реакций между комплексами сульфидных катион-радикалов, [> S… S <] (+) и [> S… NH 2 R] (+), и анион-радикалы супероксида или диоксида углерода.J Phys Chem A 104: 1240–1245. https://doi.org/10.1021/jp98
CAS
Статья
Google Scholar
Brückner C, Fahr A, Imhof D, Scriba GK (2012) Кинетика разложения дикетопиперазина, полученного из аспартил-трипептида, в принудительных условиях. J Pharm Sci 101: 4178–4190. https://doi.org/10.1002/jps.23272
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Büttel IC et al (2011) Вывод оценки иммуногенности терапевтических белков на новый уровень.Биологические препараты 39: 100–109. https://doi.org/10.1016/j.biologicals.2011.01.006
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Capasso S, Mazzarella L, Sica F, Zagari A (1989) Деамидирование через циклический имид в аспарагиниловых пептидах. Pept Res 2: 195–200
CAS
PubMed
Google Scholar
Capasso S, Mazzarella L, Sica F, Zagari A (1991a) 1-е свидетельство спонтанного дезамидирования остатка глутамина через циклический имид до альфа-глутаминового и гамма-глутаминового остатков в физиологических условиях.J Chem Soc Chem Commun. https://doi.org/10.1039/c39
1667
Артикул
Google Scholar
Capasso S, Mazzarella L, Zagari A (1991b) Деамидирование аспарагиниловых пептидов с помощью циклического имида: зависимость от солей, буферов и органических растворителей. Pept Res 4: 234–238
CAS
PubMed
Google Scholar
Capasso S, Mazzarella L, Sica F, Zagari A, Salvadori S (1992) Спонтанная циклизация боковой цепи аспарагиновой кислоты до производного сукцинимида.J Chem Soc Chem Commun. https://doi.org/10.1039/c39
0919
Артикул
Google Scholar
Capasso S, Mazzarella L, Sica F, Zagari A, Salvadori S (1993) Кинетика и механизм образования сукцинимидного кольца в процессе дезамидирования остатков аспарагина. J. Chem Soc Perkin Trans 2: 679–682. https://doi.org/10.1039/P290679
Артикул
Google Scholar
Capasso S, Vergara A, Mazzarella L (1998) Механизм образования 2,5-диоксопиперазина.J Am Chem Soc 120: 1990–1995. https://doi.org/10.1021/ja972051a
CAS
Статья
Google Scholar
Chelius D, Rehder DS, Bondarenko PV (2005) Идентификация и характеристика сайтов дезамидирования в консервативных областях гамма-антител иммуноглобулина человека. Anal Chem 77: 6004-6011. https://doi.org/10.1021/ac050672d
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Chelius D et al (2006) Образование пироглутаминовой кислоты из N-концевой глутаминовой кислоты в иммуноглобулиновых гамма-антителах.Anal Chem 78: 2370–2376. https://doi.org/10.1021/ac051827k
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Чу Дж. У., Инь Дж., Брукс Б. Р., Ван Д. И., Риччи М. С., Бремс Д. Н., Траут Б. Л. (2004) Полная картина неспецифического окисления остатков метионина пероксидами в белковых фармацевтических препаратах. J Pharm Sci 93: 3096–3102. https://doi.org/10.1002/jps.20207
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Chumsae C, Gaza-Bulseco G, Sun J, Liu H (2007) Сравнение термической стабильности и химического стресса образцов полностью человеческого моноклонального антитела при окислении метионина.J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci 850: 285–294. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2006.11.050
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Кларк С. (1987) Склонность к спонтанному образованию сукцинимида из аспартильных и аспарагинильных остатков в клеточных белках. Int J Pept Protein Res 30: 808–821
CAS
PubMed
Google Scholar
Cohen SL, Price C, Vlasak J (2007) Бета-элиминация и гидролиз пептидной связи: два различных механизма шарнирной фрагментации человеческого IgG1 при хранении.J Am Chem Soc 129: 6976–6977. https://doi.org/10.1021/ja0705994
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Corthay A, Backlund J, Broddefalk J, Michaelsson E, Goldschmidt TJ, Kihlberg J, Holmdahl R (1998) Гликозилирование эпитопа играет решающую роль для распознавания Т-клетками коллагена типа II при коллаген-индуцированном артрите. Eur J Immunol 28: 2580–2590. https://doi.org/10.1002/(SICI)1521-4141(199808)28:08%3c2580:AID-IMMU2580%3e3.0.CO; 2-X
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Costantino HR, Langer R, Klibanov AM (1994) Индуцированная влагой агрегация лиофилизированного инсулина. Pharm Res 11: 21–29. https://doi.org/10.1023/A:1018981208076
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Creed D (1984a) Фотофизика и фотохимия аминокислот, поглощающих в ближнем УФ-диапазоне.1. Триптофан и его простые производные. Photochem Photobiol 39: 537–562
CAS
Google Scholar
Creed D (1984b) Фотофизика и фотохимия аминокислот, поглощающих в ближнем УФ-диапазоне. 2. Тирозин и его простые производные. Photochem Photobiol 39: 563–575
CAS
Google Scholar
д’Алессандро Н., Бианки Дж., Фанг XW, Джин Ф.М., Шухманн HP, фон Зоннтаг С. (2000) Реакция супероксида с радикалами феноксильного типа.J Chem Soc Perk Trans 2: 1862–1867. https://doi.org/10.1039/b003346o
Артикул
Google Scholar
Даррингтон Р.Т., Андерсон Б.Д. (1994) Роль внутримолекулярного нуклеофильного катализа и эффекты самоассоциации на дезамидирование человеческого инсулина при низком pH. Pharm Res 11: 784–793
CAS
PubMed
Google Scholar
Davies MJ (2003) Опосредованное синглетным кислородом повреждение белков и его последствия.Biochem Biophys Res Commun 305: 761–770
CAS
PubMed
Google Scholar
Дэвис М.Дж. (2004) Реактивные частицы образуются на белках, подвергнутых воздействию синглетного кислорода. Photochem Photobiol Sci 3: 17–25. https://doi.org/10.1039/b307576c
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Дэвис М.Дж., Гилберт BC (1992) Аннотация ChemInform: свободнорадикальные реакции: фрагментация и перегруппировки в водном растворе.ХимИнформ 23: 285. https://doi.org/10.1002/chin.1985
Артикул
Google Scholar
Дэвис MJ, Truscott RJW (2001) Фотоокисление белков и его роль в катарактогенезе. J Photochem Photobiol B 63: 114–125. https://doi.org/10.1016/S1011-1344(01)00208-1
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Dehart MP, Anderson BD (2007) Роль циклического имида в альтернативных путях деградации аспарагинсодержащих пептидов и белков.J Pharm Sci 96: 2667–2685. https://doi.org/10.1002/jps.20905
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
D’Hondt M, Bracke N, Taevernier L, Gevaert B, Verbeke F, Wynendaele E, De Spiegeleer B (2014a) Связанные примеси в пептидных лекарствах. Дж. Фарм Биомед 101: 2–30. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2014.06.012
CAS
Статья
Google Scholar
D’Hondt M, Fedorova M, Peng CY, Gevaert B, Taevernier L, Hoffmann R, De Spiegeleer B (2014b) Разложение пептида бусерелина под действием сухого тепла: кинетика и профилирование деградации.Int J Pharm 467: 48–59. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2014.03.043
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Dick LWJ, Kim C, Qiu D, Cheng KC (2006) Определение происхождения N-концевой вариации пиро-глутамата в моноклональных антителах с использованием модельных пептидов. Biotechnol Bioeng 97: 544–553. https://doi.org/10.1002/bit.21260
CAS
Статья
Google Scholar
Dillon TM et al (2008) Структурная и функциональная характеристика изоформ дисульфидов подкласса человеческого IgG2.J Biol Chem 283: 16206–16215. https://doi.org/10.1074/jbc.m709988200
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Dimarchi RD, Tam JP, Kent SB, Merrifield RB (1982) Слабое катализируемое кислотой образование пирролидонкарбоновой кислоты из глутамина во время твердофазного пептидного синтеза. Минимизация за счет быстрого сцепления. Int J Pept Protein Res 19: 88–93
CAS
PubMed
Google Scholar
Doyle HA, Mamula MJ (2012) Аутоантигенез: эволюция модификаций белков при аутоиммунных заболеваниях.Curr Opin Immunol 24: 112–118. https://doi.org/10.1016/j.coi.2011.12.003
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Doyle HA, Gee RJ, Mamula MJ (2007) Измененная иммуногенность изоаспартатсодержащих белков. Аутоиммунитет 40: 131–137. https://doi.org/10.1080/080601165180
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ecker DM, Jones SD, Levine HL (2015) Рынок терапевтических моноклональных антител.MAbs 7: 9–14. https://doi.org/10.4161/19420862.2015.989042
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Эгглтон П., Хей Р., Виньярд П.Г. (2008) Следствие неоантигенности «измененного я». Ревматология (Оксфорд) 47: 567–571. https://doi.org/10.1093/rheumatology/ken014
CAS
Статья
Google Scholar
Эреншафт М., Детердинг Л.Дж., Мейсон Р.П. (2015) Tripping up Trp: модификация белковых остатков триптофана реактивными формами кислорода, способы обнаружения и биологические последствия.Free Radic Biol Med 89: 220–228. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2015.08.003
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Ellmer D, Brehs M, Haj-Yahya M, Lashuel HA, Becker CFW (2019) Одиночные посттрансляционные модификации в доменах центральных повторов Tau4 влияют на его агрегацию и связывание с тубулином. Angew Chem Int Ed. 58: 1616–1620. https://doi.org/10.1002/anie.201805238
CAS
Статья
Google Scholar
Финли Э.Л., Диллон Дж., Крауч Р.К., Шей К.Л. (1998) Идентификация продуктов окисления триптофана в бычьем альфа-кристаллине.Protein Sci 7: 2391–2397. https://doi.org/10.1002/pro.5560071116
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Fischer WH, Spiess J (1987) Идентификация глутамилциклазы млекопитающих, превращающей глутамил в пироглутамилпептиды. Proc Natl Acad Sci USA 84: 3628–3632. https://doi.org/10.1073/pnas.84.11.3628
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Fornelli L et al (2012) Анализ интактного моноклонального антитела IgG1 с помощью диссоциации с переносом электрона Orbitrap FTMS.Протеомика клеток Mol 11: 1758–1767. https://doi.org/10.1074/mcp.m112.019620
Артикул
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Forstenlehner IC, Holzmann J, Toll H, Huber CG (2015) Определение характеристик и абсолютное количественное определение окисления пегфилграстима методом нисходящей высокоэффективной жидкостной хроматографии-масс-спектрометрии. Anal Chem 87: 9336–9343. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.5b02029
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Fournet M, Bonte F, Desmouliere A (2018) Повреждение гликирования: возможный центр основных патофизиологических нарушений и старения.Дис. Старения 9: 880–900. https://doi.org/10.14336/AD.2017.1121
Артикул
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Гарнер Б., Вальдек А.Р., Виттинг П.К., Рай К.А., Стокер Р. (1998) Окисление липопротеинов высокой плотности. II. Доказательства прямого восстановления гидропероксидов липидов остатками метионина аполипопротеинов AI и AII. J Biol Chem 273: 6088–6095
CAS
PubMed
Google Scholar
Garrison WM (1987) Реакционные механизмы при радиолизе пептидов, полипептидов и белков.Chem Rev 87: 381–398. https://doi.org/10.1021/cr00078a006
CAS
Статья
Google Scholar
Gaza-Bulseco G, Faidu S, Hurkmans K, Chumsae C, Liu HC (2008) Влияние окисления метионина рекомбинантного моноклонального антитела на аффинность связывания с белком A и белком G. J Chromatogr B 870: 55– 62. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2008.05.045
CAS
Статья
Google Scholar
Гейгер Т., Кларк С. (1987) Деамидирование, изомеризация и рацемизация по аспарагиниловым и аспартильным остаткам в пептидах.Связанные сукцинимидом реакции, способствующие расщеплению белка. J Biol Chem 262: 785–794
CAS
PubMed
Google Scholar
Ghogare AA, Greer A (2016) Использование синглетного кислорода для синтеза натуральных продуктов и лекарств. Chem Rev 116: 9994–10034. https://doi.org/10.1021/acs.chemrev.5b00726
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Gisin BF, Merrifield RB (1972) Карбоксикатализируемый внутримолекулярный аминолиз.Побочная реакция при твердофазном синтезе пептидов. J Am Chem Soc 94: 3102–3106
CAS
PubMed
Google Scholar
Goolcharran C, Borchardt RT (1998) Кинетика образования дикетопиперазина с использованием модельных пептидов. J Pharm Sci 87: 283–288. https://doi.org/10.1021/js970325m
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Goolcharran C, Stauffer LL, Cleland JL, Borchardt RT (2000) Влияние остатка гистидина на С-концевой стороне остатка аспарагинила на скорость дезамидирования с использованием модельных пентапептидов.J Pharm Sci 89: 818–825. https://doi.org/10.1002/(SICI)1520-6017
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Gracanin M, Hawkins CL, Pattison DI, Davies MJ (2009) Опосредованное синглетным кислородом окисление аминокислот и белков: образование пероксидов триптофана и продуктов разложения. Free Radic Biol Med 47: 92–102. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2009.04.015
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Grassi L, Regl C, Wildner S, Gadermaier G, Huber CG, Cabrele C, Schubert M (2017) Полное определение сукцинимида методом ЯМР, его обнаружение и количественное определение в пептидах и интактных белках.Anal Chem 89: 11962–11970. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.7b01645
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Grassi L, Roschger C, Stanojlovic V, Cabrele C (2018) Исследовательское исследование химического синтеза домена Fc Ch4 иммуноглобулина G1. J Pept Sci 24: e3126. https://doi.org/10.1002/psc.3126
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Gu S et al (2010) Характеристика трисульфидной модификации в антителах.Анальный Биохим 400: 89–98. https://doi.org/10.1016/j.ab.2010.01.019
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Harris RJ et al (2001) Идентификация множественных источников зарядовой гетерогенности рекомбинантного антитела. J Chromatogr B Biomed Sci Appl 752: 233–245
CAS
PubMed
Google Scholar
Hawe A, Poole R, Romeijn S, Kasper P, van der Heijden R, Jiskoot W (2009) На пути к термостабильным составам окситоцина: анализ кинетики разложения и идентификация продуктов разложения.Pharm Res 26: 1679–1688. https://doi.org/10.1007/s11095-009-9878-2
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Hensel M et al (2011) Идентификация потенциальных сайтов окисления триптофана в рекомбинантных антителах с использованием трет-бутилгидропероксида и количественной ЖХ-МС. PLoS One 6: e17708. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0017708
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Hovorka SW, Biesiada H, Williams TD, Huhmer A, Schöneich C (2002) Высокая чувствительность инсулина Zn 2+ к окислению, катализируемому металлами: обнаружение 2-оксогистидина с помощью тандемной масс-спектрометрии.Pharm Res 19: 530–537. https://doi.org/10.1023/a:1015164200431
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Hsu YR, Narhi LO, Spahr C, Langley KE, Lu HS (1996) Окисление метионином in vitro фактора стволовых клеток человека, производного Escherichia coli : влияние на молекулярную структуру, биологическую активность и димеризацию. Protein Sci 5: 1165–1173. https://doi.org/10.1002/pro.5560050619
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Huang L, Lu J, Wroblewski VJ, Beals JM, Riggin RM (2005) Характеристика дезамидирования моноклональных антител in vivo с помощью ЖХ / МС / МС.Anal Chem 77: 1432–1439. https://doi.org/10.1021/ac0494174
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Hudson DA, Gannon SA, Thorpe C (2015) Окислительное сворачивание белка: от реакций тиол-дисульфидного обмена до окислительно-восстановительного баланса эндоплазматического ретикулума. Free Radic Biol Med 80: 171–182. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2014.07.037
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Huvaere K, Skibsted LH (2009) Окисление триптофана и гистидина под действием света.Реакционная способность ароматических N -гетероциклов по отношению к триплетно-возбужденным флавинам. J Am Chem Soc 131: 8049–8060. https://doi.org/10.1021/ja809039u
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ито С., Като Т., Шинпо К., Фуджита К. (1984) Окисление остатков тирозина в белках тирозиназой. Образование связанного с белком 3,4-дигидроксифенилаланина и 5- S -цистеинил-3,4-дигидроксифенилаланина. Biochem J 222: 407–411
CAS
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Ито С., Като Т., Фуджита К. (1988) Ковалентное связывание катехолов с белками через сульфгидрильную группу.Biochem Pharmacol 37: 1707–1710
CAS
PubMed
Google Scholar
Jin Y et al (2019) Комплексная характеристика моноклональных антител с помощью масс-спектрометрии с ионным циклотронным резонансом с преобразованием Фурье. MAbs 11: 106–115. https://doi.org/10.1080/19420862.2018.1525253
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Jordan GM, Yoshioka S, Terao T (1994) Агрегация бычьего сывороточного альбумина в растворе и в твердом состоянии.J Pharm Pharmacol 46: 182–185. https://doi.org/10.1111/j.2042-7158.1994.tb03774.x
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Jornvall H (1974) Блокированные альфа-аминогруппы в пептидах из-за образования дикетопиперазина. FEBS Lett 38: 329–333. https://doi.org/10.1016/0014-5793(74)80084-0
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Джоши А.Б., Савай М., Кирни В.Р., Кирш Л.Е. (2005) Исследования механизма расщепления аспарагиновой кислоты и дезамидирования глутамина при кислотной деградации глюкагона.J Pharm Sci 94: 1912–1927. https://doi.org/10.1002/jps.20405
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Джуран Дж. М. (1992) Качество как дизайн: новые шаги в планировании качества товаров и услуг. Free Press, Нью-Йорк
Google Scholar
Kang H, Tolbert TJ, Schöneich C (2019) Фотоиндуцированная фрагментация боковой цепи тирозина в IgG4-Fc: механизмы и эффекты изотопов растворителя.Мол Фарм 16: 258–272. https://doi.org/10.1021/acs.molpharmaceut.8b00979
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Kettenhofen NJ, Wood MJ (2010) Образование, реакционная способность и обнаружение белковых сульфеновых кислот. Chem Res Toxicol 23: 1633–1646. https://doi.org/10.1021/tx100237w
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Khawli LA et al (2010) Варианты заряда в IgG1: выделение, характеристика, свойства связывания in vitro и фармакокинетика у крыс.MAbs 2: 613–624. https://doi.org/10.4161/mabs.2.6.13333
Артикул
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Кришна М., Надлер С.Г. (2016) Иммуногенность к биотерапевтическим средствам — роль иммунных комплексов против лекарств. Фронт Иммунол 7:21. https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00021
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Крохин О.В., Антоновичи М., Энс В., Уилкинс Дж. А., Стэндинг К.Г. (2006) Деамидирование последовательностей -Asn-Gly- во время подготовки образцов для протеомики: последствия для анализа MALDI и HPLC-MALDI.Anal Chem 78: 6645–6650. https://doi.org/10.1021/ac061017o
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Кумар А., Баххават А.К. (2012) Пироглутаминовая кислота: проливает свет на малоизученный метаболит. Curr Sci India 102: 288–297
CAS
Google Scholar
Kuriakose A, Chirmule N, Nair P (2016) Иммуногенность биотерапевтических средств: причины и связь с посттрансляционными модификациями J.Immunol Res 2016: 1298473
Google Scholar
Lam XM, Yang JY, Cleland JL (1997) Антиоксиданты для предотвращения окисления метионина в рекомбинантных моноклональных антителах HER2. J Pharm Sci 86: 1250–1255. https://doi.org/10.1021/js970143s
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Lampi KJ, Amyx KK, Ahmann P, Steel EA (2006) Деамидирование βB2-кристаллина хрусталика человека дестабилизирует димер.Биохимия 45: 3146–3153. https://doi.org/10.1021/bi052051k
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Langlots R, Ali H, Brasseur N, Wagner JR, van Lier JE (1986) Биологическая активность фиталоцианинов-IV. Фотоокисление l-триптофана и холестерина, сенсибилизированное типом II, сульфированными металлофталоцианинами. Photochem Photobiol 44: 117–123
Google Scholar
Lau JL, Dunn MK (2018) Терапевтические пептиды: исторические перспективы, текущие тенденции развития и будущие направления.Bioorg Med Chem 26: 2700–2707. https://doi.org/10.1016/j.bmc.2017.06.052
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Lei M et al (2017) Структурная корреляция светоиндуцированной реактивности гистидина в модельном белке. Anal Chem 89: 7225-7231. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.7b01457
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Лермит Ф, Цыбин Ю.О., О’Коннор ПБ, Лоо Дж.А. (2019) Верх или средний? Вверх или вниз? К стандартному лексикону нисходящего подхода к белковой и родственной им масс-спектрометрии.J Am Soc Mass Spectrom 30: 1149–1157. https://doi.org/10.1007/s13361-019-02201-x
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Li SH, Schöneich C, Borchardt RT (1995) Химическая нестабильность белковых фармацевтических препаратов — механизмы окисления и стратегии стабилизации. Biotechnol Bioeng 48: 490–500. https://doi.org/10.1002/bit.260480511
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Li YM, Polozova A, Gruia F, Feng JH (2014) Характеристика продуктов распада моноклонального антитела с измененным цветом: хромофоры, полученные из триптофана.Anal Chem 86: 6850–6857. https://doi.org/10.1021/ac404218t
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Linetsky M, Hill JMW, LeGrand RD, Hu F (2004) Сшивки дегидроаланина в хрусталике человека. Exp Eye Res 79: 499–512. https://doi.org/10.1016/j.exer.2004.06.026
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Liu D et al (2008) Изменения структуры и стабильности человеческого IgG1 Fc в результате окисления метионина.Биохимия 47: 5088–5100. https://doi.org/10.1021/bi7o2238b
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Liu YD, Goetze AM, Bass RB, Flynn GC (2011) Превращение N-концевого глутамата в пироглутамат in vivo для человеческих антител IgG2. J Biol Chem 286: 11211–11217. https://doi.org/10.1074/jbc.m110.185041
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Лю Ф.В., Лу В.К., Фанг Ю.Г., Лю Дж.Б. (2014a) Эволюция динамики окисления гистидина: отсутствие реакции в газовой фазе, пероксиды в гидратированных кластерах и зависимость от pH в растворе.Phys Chem Chem Phys 16: 22179–22191. https://doi.org/10.1039/c4cp03550j
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Liu M, Zhang Z, Cheetham J, Ren D, Zhou ZS (2014b) Открытие и характеристика фотоокислительной гистидин-гистидиновой перекрестной связи в антителе IgG1 с использованием 18 O-мечения и масс-спектрометрии. Anal Chem 86: 4940–4948. https://doi.org/10.1021/ac500334k
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Liu K, Liu Y, Li L, Qin P, Iqbal J, Deng Y, Qing H (2016) Гликирование изменяет процесс фосфорилирования тау-белка, изменяя свойство агрегации изоформ тау-белка.Biochim Biophys Acta 1862: 192–201. https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2015.12.002
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Luo Q, Joubert MK, Stevenson R, Ketchem RR, Narhi LO, Wypych J (2011) Химические модификации терапевтических белковых агрегатов, генерируемых в различных стрессовых условиях. J. Biol Chem. 286: 25134–25144. https://doi.org/10.1074/jbc.M110.160440
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Любарская Ю., Хоуд Д., Вудард Дж., Мерфи Д., Мхатре Р. (2006) Анализ изоформ рекомбинантных моноклональных антител с помощью масс-спектрометрии с ионизацией электрораспылением как стратегия оптимизации характеристик гетерогенности заряда рекомбинантных моноклональных антител.Анальная биохимия 348: 24–39. https://doi.org/10.1016/j.ab.2005.10.003
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Маллагарай А. и др. (2019) Посттрансляционная модификация капсидного белка норовируса человека ослабляет связывание гликанов. Природные коммуникации 10: 1320. https://doi.org/10.1038/s41467-019-09251-5
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Mamula MJ, Gee RJ, Elliott JI, Sette A, Southwood S, Jones PJ, Blier PR (1999) Посттрансляционная модификация изоаспартила запускает аутоиммунные ответы на собственные белки.J Biol Chem 274: 22321–22327. https://doi.org/10.1074/jbc.274.32.22321
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Мао И., Валеха С.Г., Роуз Дж. К., Хендриксон К.Л., Маршалл А.Г. (2013) Структурный анализ интактного моноклонального антитела сверху вниз с помощью электронно-захватной диссоциации-преобразования Фурье ионно-циклотронного резонанса-масс-спектрометрии. Anal Chem 85: 4239–4246. https://doi.org/10.1021/ac303525n
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Marcus F (1985) Предпочтительное расщепление пептидных связей аспартил-пролил в разбавленной кислоте.Int J Pept Protein Res 25: 542–546
CAS
PubMed
Google Scholar
Martinez T et al (2008) Дисульфидная связь структурных изоформ человеческого иммуноглобулина G2. Биохимия 47: 7496-7508. https://doi.org/10.1021/bi800576c
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Матвеенко М., Цичеро Э., Фосса П., Беккер К.Ф. (2016) Нарушение шаперонной активности белка теплового шока человека Hsp27, сайт-специфически модифицированного аргпиримидином.Angew Chem Int Ed. 55: 11397–11402. https://doi.org/10.1002/anie.201605366
CAS
Статья
Google Scholar
Millington KR, Church JS (1997) Фотодеградация кератина шерсти. 2. Предлагаемые механизмы с участием цистина. J Photochem Photobiol B 39: 204–212. https://doi.org/10.1016/S1011-1344(96)00020-6
CAS
Статья
Google Scholar
Моллер М.Н., Хатч Д.М., Ким Х.Й., Портер Н.А. (2012) Супероксидная реакция с тирозильными радикалами приводит к образованию пара-гидроперокси- и пара-гидроксипроизводных тирозина.J Am Chem Soc 134: 16773–16780. https://doi.org/10.1021/ja307215z
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Montes-Cortes DH, Hicks JJ, Ceballos-Reyes GM, Garcia-Sanchez JR, Medina-Navarro R, Olivares-Corichi IM (2010) Химические и функциональные изменения человеческого инсулина при инкубации in vitro с кровью больных диабетом при окислительном стрессе. Метаболизм 59: 935–942. https://doi.org/10.1016/j.metabol.2009.10.013
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Moorhouse KG, Nashabeh W., Deveney J, Bjork NS, Mulkerrin MG, Ryskamp T (1997) Валидация метода ВЭЖХ для анализа гетерогенности заряда рекомбинантного моноклонального антитела IDEC-C2B8 после переваривания папаином.Дж. Фарм Биомед 16: 593–603. https://doi.org/10.1016/s0731-7085(97)00178-7
CAS
Статья
Google Scholar
Мородер Л., Бюхнер Дж. (2008) Окислительная укладка пептидов и белков (RSC Biomolecular Sciences). Издательство RSC, Кембридж
Google Scholar
Mozziconacci O, Kerwin BA, Schöneich C (2010) Обратимый перенос водорода между тиильным радикалом цистеина и глицином и аланином в модельных пептидах: ковалентный обмен H / D, радикально-радикальные реакции и превращение l- в d-Ala.J. Phys Chem B 114: 6751–6762. https://doi.org/10.1021/jp101508b
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Mozziconacci O, Kerwin BA, Schöneich C (2011) Обратимые реакции переноса водорода тиильных радикалов цистеина в пептидах: превращение цистеина в дегидроаланин и аланин и аланина в дегидроаланин. J. Phys Chem B 115: 12287–12305. https://doi.org/10.1021/jp2070453
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Mozziconacci O, Ji JA, Wang YJ, Schöneich C (2013) Катализируемое металлами окисление остатков белкового метионина в паратиреоидном гормоне человека (1–34): образование гомоцистеина и новая реакция метионин-зависимого гидролиза.Мол Фарм 10: 739–755. https://doi.org/10.1021/mp300563m
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Mozziconacci O, Okbazghi S, More AS, Volkin DB, Tolbert T, Schoneich C (2016a) Сравнительная оценка химической стабильности 4 четко определенных гликоформ иммуноглобулина G1-Fc. J Pharm Sci 105: 575–587. https://doi.org/10.1016/j.xphs.2015.10.024
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Mozziconacci O, Arora J, Toth RT, Joshi SB, Zhou S, Volkin DB, Schöneich C (2016b) Сайт-специфическая реакция гидролиза C -конечный конец метионина в Met-His во время катализируемого металлами окисления IgG -1.Мол Фарм 13: 1317–1328. https://doi.org/10.1021/acs.molpharmaceut.5b00944
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Mukherjee R, Adhikary L, Khedkar A, Iyer H (2010) Исследование дезамидирования терапевтического гамма-иммуноглобулина (IgG1) с помощью масс-спектрометрии «снизу вверх» с диссоциацией с переносом электрона. Rapid Commun Mass Spectrom 24: 879–884. https://doi.org/10.1002/rcm.4464
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Mulinacci F, Capelle MA, Gurny R, Drake AF, Arvinte T (2011) Стабильность гормона роста человека: влияние окисления метионина на термическое сворачивание.J Pharm Sci 100: 451–463
CAS
PubMed
Google Scholar
Mulinacci F, Poirier E, Capelle MA, Gurny R, Arvinte T (2013) Влияние окисления метионина на агрегацию рекомбинантного гормона роста человека. Eur J Pharm Biopharm 85: 42–52. https://doi.org/10.1016/j.ejpb.2013.03.015
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Накагава М., Ватанабе Х., Кодато С., Окадзима Х., Хино Т., Флиппен Дж. Л., Виткоп Б. (1977) Действительная модель механизма окисления триптофана до формилкинуренина-25 лет спустя.Proc Natl Acad Sci USA 74: 4730–4733
CAS
PubMed
Google Scholar
Нашеф А.С., Осуга Д.Т., Ли Х.С., Ахмед А.И., Уитакер Дж. Р., Фини Р. Э. (1977) Влияние щелочи на белки — дисульфиды и их продукты. J Agric Food Chem 25: 245–251. https://doi.org/10.1021/jf60210a020
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Николарди С., Дилдер А.М., Палмблад М., ван дер Бургт Ю.Е. (2014) Структурный анализ интактного моноклонального антитела путем онлайн-электрохимического восстановления дисульфидных связей и масс-спектрометрии ионного циклотронного резонанса с преобразованием Фурье.Anal Chem 86: 5376-5382. https://doi.org/10.1021/ac500383c
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Nielsen RW, Tachibana C, Hansen NE, Winther JR (2011) Трисульфиды в белках. Антиоксидный окислительно-восстановительный сигнал 15: 67–75. https://doi.org/10.1089/ars.2010.3677
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Okamoto K, Kadowaki T, Nakayama K, Yamamoto K (1996) Клонирование и секвенирование гена, кодирующего новую лизин-специфичную цистеиновую протеиназу (Lys-gingipain) в Porphyromonas gingivalis : структурная взаимосвязь с аргинин-специфическим цистеиновая протеиназа (Арг-гингипаин).J Biochem 120: 398-406. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.jbchem.a021426
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Olivares-Corichi IM, Ceballos G, Medina-Santillan R, Medina-Navarro R, Guzman-Grenfell AM, Hicks JJ (2005) Окисление реактивными формами кислорода (ROS) изменяет структуру человеческого инсулина и снижает инсулин -зависимая утилизация d-глюкозы-C 14 жировой тканью человека. Front Biosci 10: 3127–3131
CAS
PubMed
Google Scholar
Oliyai C, Borchardt RT (1993) Химические пути деградации пептидов.IV. Пути, кинетика и механизм деградации остатка аспартила в модельном гексапептиде. Pharm Res 10: 95–102
CAS
PubMed
Google Scholar
Oyler AR, Naldi RE, Lloyd JR, Graden DA, Shaw CJ, Cotter ML (1991) Характеристика продуктов распада раствора гистрелина, агониста гонадотропин-рилизинг-гормона (Lh Rh). J Pharm Sci 80: 271–275. https://doi.org/10.1002/jps.2600800316
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Palmer DE et al (1992) Влияние дегидроаланина на конформации пептидов.J Am Chem Soc 114: 5634–5642. https://doi.org/10.1021/ja00040a024
CAS
Статья
Google Scholar
Pan H, Chen K, Chu LP, Kinderman F, Apostol I, Huang G (2009) Окисление метионина в человеческом Fc IgG2 снижает сродство связывания с протеином A и FcRn. Prot Sci 18: 424–433. https://doi.org/10.1002/pro.45
CAS
Статья
Google Scholar
Паскуаль-Сальседо Д. и др. (2011) Влияние иммуногенности на эффективность длительного лечения инфликсимабом при ревматоидном артрите.Ревматология (Оксфорд) 50: 1445–1452. https://doi.org/10.1093/rheumatology/ker124
CAS
Статья
Google Scholar
Пачорник А., Соколовский М. (1964) Неферментативное расщепление пептидных цепей по остаткам цистеина и серина путем их превращения в дегидроаланин. 1. Гидролитическое и окислительное расщепление остатков дегидроаланина. J Am Chem Soc 86: 1206–1212. https://doi.org/10.1021/ja01060a049
CAS
Статья
Google Scholar
Patel K, Borchardt RT (1990a) Химические пути деградации пептидов.II. Кинетика дезамидирования аспарагинильного остатка в модельном гексапептиде. Pharm Res 7: 703–711
CAS
PubMed
Google Scholar
Patel K, Borchardt RT (1990b) Химические пути деградации пептидов. III. Влияние первичной последовательности на пути дезамидирования аспарагинильных остатков в гексапептидах. Pharm Res 7: 787–793
CAS
PubMed
Google Scholar
Паттисон Д.И., Рахманто А.С., Дэвис М.Дж. (2012) Фотоокисление белков.Photochem Photobiol Sci 11: 38–53. https://doi.org/10.1039/c1pp05164d
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Педзинский Т., Маркевич А., Марчиняк Б. (2009) Фотосенсибилизированное окисление производных метионина. Исследования лазерного импульсного фотолиза. Res Chem Intermediat 35: 497–506. https://doi.org/10.1007/s11164-009-0046-4
CAS
Статья
Google Scholar
Перес-Гармендиа Р., Геворкян Г. (2013) Модифицированные пироглутаматом амилоидные бета-пептиды: новые цели для иммунотерапии болезни Альцгеймера.Curr Neuropharmacol 11: 491–498. https://doi.org/10.2174/1570159×11311050004
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Pigault C, Gerard D (1984) Влияние расположения триптофанильных остатков в белках на их светочувствительность. Photochem Photobiol 40: 291–297. https://doi.org/10.1111/j.1751-1097.1984.tb04590.x
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Пинеда С., Кастанеда Эрнандес Г., Якобс И.А., Альварес Д.Ф., Карини С. (2016) Оценка иммуногенности биофармацевтических препаратов.BioDrugs 30: 195–206. https://doi.org/10.1007/s40259-016-0174-5
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Radkiewicz JL, Zipse H, Clarke S, Houk KN (1996) Ускоренная рацемизация аспарагиновой кислоты и остатков аспарагина через сукцинимидные промежуточные соединения: теоретическое исследование механизма ab initio. J Am Chem Soc 118: 9148–9155. https://doi.org/10.1021/ja953505b
CAS
Статья
Google Scholar
Regl C, Wohlschlager T, Holzmann J, Huber CG (2017) Общий метод ВЭЖХ для абсолютного количественного определения окисления в моноклональных антителах и Fc-слитых белках с использованием УФ- и МС-детекции.Anal Chem 89: 8391-8398. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.7b01755
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Редер Д.С., Диллон Т.М., Пайпс Г.Д., Бондаренко П.В. (2006) Обращенно-фазовый жидкостной хроматографический / масс-спектрометрический анализ восстановленных моноклональных антител в фармацевтике. J Chromatogr A 1102: 164–175. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2005.10.053
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Reissner KJ, Aswad DW (2003) Деамидирование и образование изоаспартата в белках: нежелательные изменения или скрытые сигналы? Cell Mol Life Sci 60: 1281–1295.https://doi.org/10.1007/s00018-003-2287-5
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Rink R et al (2010) Для защиты пептидных фармацевтических препаратов от пептидаз. J Pharmacol Toxicol Methods 61: 210–218. https://doi.org/10.1016/j.vascn.2010.02.010
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Риццуто Ф., Спайкс Дж. Д. (1977) Сенсибилизированное эозином фотоокисление замещенных фенилаланинов и тирозинов.Photochem Photobiol 25: 465–476
CAS
PubMed
Google Scholar
Робинсон А.Б., Радд С.Дж. (1974) Деамидирование глутаминовых и аспарагинильных остатков в пептидах и белках. Curr Top Cell Regul 8: 247–295
CAS
PubMed
Google Scholar
Робинсон А.Б., Скотчл Дж. В., Маккроу Дж. Х. (1973) Скорость неферментативного дезамидирования глутаминовых и аспарагинильных остатков в пентапептидах.J Am Chem Soc 95: 8156–8160. https://doi.org/10.1021/ja00805a032
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Робинсон Н. Э., Робинсон З. В., Робинсон Б. Р., Робинсон А. Л., Робинсон Дж. А., Робинсон М. Л., Робинсон А. Б. (2004) Структурно-зависимое неферментативное дезамидирование глутамил- и аспарагинилпентапептидов. J Pept Res 63: 426–436. https://doi.org/10.1111/j.1399-3011.2004.00151.x
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Rogstad S, Faustino A, Ruth A, Keire D, Boyne M, Park J (2017) Ретроспективная оценка использования масс-спектрометрии в заявках на получение лицензии FDA на биологические препараты.J Am Soc Mass Spectrom 28: 786–794. https://doi.org/10.1007/s13361-016-1531-9
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Russo C et al (2002) Пироглутамат-модифицированные амилоидные β-пептиды — AβN3 (pE) — сильно влияют на выживаемость культивируемых нейронов и астроцитов. J Neurochem 82: 1480–1489. https://doi.org/10.1046/j.1471-4159.2002.01107.x
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Sadineni V, Schöneich C (2007) Селективное окисление Zn 2+ -инсулина, катализируемое Cu 2+ .J Pharm Sci 96: 1844–1847. https://doi.org/10.1002/jps.20834
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Сайто И., Мацуура Т., Накагава М., Хино Т. (1977) Перекисные промежуточные соединения в фотосенсибилизированной оксигенации производных триптофана. Acc Chem Res 10: 3346–3352
Google Scholar
Сакамото Х., Машима Т., Ямамото К., Цуруо Т. (2002) Модуляция антиапоптотической активности белка теплового шока 27 (Hsp27) с помощью модификации метилглиоксаля.J Biol Chem 277: 45770–45775. https://doi.org/10.1074/jbc.m207485200
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Schilling S, Hoffmann T, Manhart S, Hoffmann M, Demuth HU (2004) Глутамилциклазы проявляют активность глутамилциклазы в мягких кислотных условиях. FEBS Lett 563: 191–196. https://doi.org/10.1016/S0014-5793(04)00300-X
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Schilling S et al (2008) Ингибирование глутамилциклазы ослабляет пироглутамат Abeta и патологию, подобную болезни Альцгеймера.Нат Мед 14: 1106–1111. https://doi.org/10.1038/nm.1872
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Schlenzig D et al (2009) Образование пироглутамата влияет на растворимость и амилоидогенность амилоидных пептидов. Биохимия 48: 7072–7078. https://doi.org/10.1021/bi
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Шон И., Кишфалуди Л. (1979) Образование аминосукциниловых пептидов во время ацидолитического снятия защиты с последующим их превращением в производные пиперазин-2,5-диона в нейтральной среде.Int J Pept Prot Res 14: 485–494
CAS
Google Scholar
Schöneich C (2000) Механизмы катализируемого металлами окисления гистидина до 2-оксогистидина в пептидах и белках. J Pharm Biomed Anal 21: 1093–1097
PubMed
Google Scholar
Schöneich C (2005) Окисление метионина реактивными формами кислорода: механизмы реакции и отношение к болезни Альцгеймера.Biochim Biophys Acta 1703: 111–119. https://doi.org/10.1016/j.bbapap.2004.09.009
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Schöneich C (2012) Радикальное повреждение серосодержащих аминокислотных остатков. Энцикл Radic Chem Biol Mater. https://doi.org/10.1002/9780470971253.rad044
Артикул
Google Scholar
Schöneich C (2016) Тиильные радикалы и индукция деградации белков.Free Radic Res 50: 143–149. https://doi.org/10.3109/10715762.2015.1077385
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Schöneich C (2017) Редокс-модификации белков, индуцированные радикалами серы: анализ и механистические аспекты. Антиоксидный окислительно-восстановительный сигнал 26: 388–405. https://doi.org/10.1089/ars.2016.6779
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Schöneich C (2018) Новые пути химической деградации белков, опосредованные окислением триптофана: фрагментация боковой цепи триптофана.J Pharm Pharmacol 70: 655–665. https://doi.org/10.1111/jphp.12688
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Schöneich C, Aced A, Asmus KD (1993) Механизм окисления алифатических тиоэфиров до сульфоксидов гидроксильными радикалами — важность молекулярного кислорода. J Am Chem Soc 115: 11376–11383. https://doi.org/10.1021/ja00077a042
Артикул
Google Scholar
Schöneich C, Zhao F, Madden KP, Bobrowski K (1994) Фрагментация боковой цепи N-концевого остатка треонина или серина, индуцированная внутримолекулярным переносом протона на гидроксисульфуранильный радикал, образованный на соседнем метионине в дипептидах.J Am Chem Soc 116: 4641–4652. https://doi.org/10.1021/ja00090a012
Артикул
Google Scholar
Schuurman J, Van Ree R, Perdok GJ, Van Doorn HR, Tan KY, Aalberse RC (1999) Нормальный человеческий иммуноглобулин G4 биспецифичен: он имеет два разных антигенсвязывающих сайта. Иммунология 97: 693–698
CAS
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Schuurman J, Perdok GJ, Gorter AD, Aalberse RC (2001) Дисульфидные связи между тяжелыми цепями IgG4 находятся в равновесии с внутрицепочечными дисульфидными связями.Мол Иммунол 38: 1–8
CAS
PubMed
Google Scholar
Schweida D, Barraud P, Regl C, Loughlin FE, Huber CG, Cabrele C, Schubert M (2019) ЯМР-сигнатура глюконоилирования: частая N-концевая модификация меченных изотопами белков. J Biomol ЯМР 73: 71–79. https://doi.org/10.1007/s10858-019-00228-6
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Скотчлер Дж. У., Робинсон А. Б. (1974) Деамидирование глутаминильных остатков — зависимость от pH, температуры и ионной силы.Анальная биохимия 59: 319–322. https://doi.org/10.1016/0003-2697(74)-2
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Scott CF, Whitaker EJ, Hammond BF, Colman RW (1993) Очистка и характеристика мощной тиоллизил-протеиназы 70 кДа (Lys-gingivain) из Porphyromonas gingivalis , которая расщепляет кининогены и фибриноген. J Biol Chem 268: 7935–7942
CAS
PubMed
Google Scholar
Сепетов Н.Ф., Крымский М.А., Овчинников М.В., Беспалова З.Д., Исакова О.Л., Соучек М., Лебль М. (1991) Перегруппировка, рацемизация и разложение пептидов в водном растворе.Pept Res 4: 308–313
CAS
PubMed
Google Scholar
Севилья, Мэриленд, Ян М.Ю., Беккер Д. (1988) Образование пероксильного радикала тиола в результате реакции тиильного радикала цистеина с молекулярным кислородом — исследование электронно-спинового резонанса. Biochem Biophis Res Commun 155: 405–410. https://doi.org/10.1016/S0006-291x(88)81100-8
CAS
Статья
Google Scholar
Шаров В.С., Феррингтон Д.А., Сквайер Т.С., Шёнейх С. (1999) Диастереоселективное восстановление связанного с белком сульфоксида метионина с помощью редуктазы сульфоксида метионина.FEBS Lett 455: 247–250
CAS
PubMed
Google Scholar
Шен Ф.Дж., Квонг М.Ю., Кек Р.Г., Харрис Р.Дж. (1996) Применение окисления трет-бутилгидропероксида для изучения участков потенциального окисления метионина в рекомбинантных антителах. В кн .: Методы химии белков VII. Academic Press Inc., Нью-Йорк, стр. 275–284
Google Scholar
Shields RL et al (2001) Картирование с высоким разрешением сайта связывания на человеческом IgG1 для Fc гамма RI, Fc гамма RII, Fc гамма RIII и FcRn и дизайн вариантов IgG1 с улучшенным связыванием с Fc гамма R.J Biol Chem 276: 6591–6604. https://doi.org/10.1074/jbc.m009483200
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Silva E et al (2019) Рибофлавин-индуцированное фотоокисление триптофана типа 1 с использованием светоизлучающего диода высокой интенсивности 365 нм. Free Radic Biol Med 131: 133–143. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2018.11.026
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Sinha S, Zhang L, Duan S, Williams TD, Vlasak J, Ionescu R, Topp EM (2009) Влияние структуры белка на скорость дезамидирования в Fc-фрагменте моноклонального антитела IgG1.Protein Sci 18: 1573–1584. https://doi.org/10.1002/pro.173
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Соколовский М., Садех Т., Пачорник А. (1964) Неферментативное расщепление пептидных цепей по остаткам цистеина и серина посредством их преобразования в дегидроаланин (DHAL). 2. Специфическое химическое расщепление цистеиниловых пептидов. J Am Chem Soc 86: 1212–1217
CAS
Google Scholar
Song Y, Buettner GR (2010) Термодинамические и кинетические соображения для реакции семихиноновых радикалов с образованием супероксида и пероксида водорода.Free Radic Biol Med 49: 919–962. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2010.05.009
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Steinberg S, Bada JL (1981) Образование дикетопиперазина во время исследований рацемизации аминокислот в дипептидах. Наука 213: 544–545. https://doi.org/10.1126/science.213.4507.544
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Steinberg SM, Bada JL (1983) Разложение пептидов в нейтральной области pH через образование дикетопиперазинов.J Org Chem 48: 2295–2298. https://doi.org/10.1021/jo00161a036
CAS
Статья
Google Scholar
Steinmann D, Mozziconacci O, Bommana R, Stobaugh JF, Wang YJ, Schöneich C (2017) Пути фотодеградации дисульфидов белка: гормон роста человека. Pharm Res 34: 2756–2778. https://doi.org/10.1007/s11095-017-2256-6
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Straub JA, Akiyama A, Parmar P, Musso GF (1995) Химические пути разложения аналога брадикинина, Rmp-7.Pharm Res 12: 305–308. https://doi.org/10.1023/a:1016203731682
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Suzuki K, Sasaki Y, Endo N, Mihara Y (1981) Синтез дикетопиперазина, катализируемый уксусной кислотой. Chem Pharm Bull 29: 233–237
CAS
Google Scholar
Sysak PK, Foote CS, Ching TY (1977) Химия синглетного кислорода. 25. Фотооксигенация метионина.Photochem Photobiol 26: 19–27. https://doi.org/10.1111/j.1751-1097.1977.tb07443.x
CAS
Статья
Google Scholar
Tamba M, Torreggiani A, Tubertini O (1995) Тиил-радикалы и тиил-пероксильные радикалы, полученные в результате облучения антиоксидантных тиоловых соединений. Radiat Phys Chem 46: 569–574. https://doi.org/10.1016/0969-806x
CAS
Статья
Google Scholar
Tassin JD, Borkman RF (1980) Скорость фотолиза некоторых дипептидов и трипептидов триптофана.Photochem Photobiol 32: 577–585. https://doi.org/10.1111/j.1751-1097.1980.tb04025.x
CAS
Статья
Google Scholar
Terral G, Beck A, Cianferani S (2016) Выводы из нативной масс-спектрометрии и масс-спектрометрии ионной подвижности для характеристики антител и продуктов на основе антител. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci 1032: 79–90. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2016.03.044
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Томита М., Ирие М., Укита Т. (1968) Сенсибилизированное фотоокисление N -бензоилгистидина.Tetrahedron Lett 9: 4933–4936
Google Scholar
Torosantucci R, Mozziconacci O, Sharov V, Schöneich C, Jiskoot W (2012) Химические модификации в агрегатах рекомбинантного человеческого инсулина, индуцированные окислением, катализируемым металлами: ковалентное сшивание посредством добавления Майкла к продуктам окисления тирозина. Pharm Res 29: 2276–2293. https://doi.org/10.1007/s11095-012-0755-z
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Torosantucci R, Sharov VS, van Beers M, Brinks V, Schöneich C, Jiskoot W (2013) Идентификация сайтов окисления и ковалентных сшивок в катализируемом металлами окисленном интерфероне бета-1a: потенциальные последствия для агрегации белков и иммуногенности .Мол Фарм 10: 2311–2322. https://doi.org/10.1021/mp300665u
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Torosantucci R, Schöneich C, Jiskoot W (2014) Окисление терапевтических белков и пептидов: структурные и биологические последствия. Pharm Res 31: 541–553. https://doi.org/10.1007/s11095-013-1199-9
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Trinder PK, Maeurer MJ, Stoerkel SS, Loos M (1997) Измененный (окисленный) C1q вызывает деструктивное и хроническое воспаление, подобное ревматоидному артриту, в структурах суставов у восприимчивых к артриту крыс.Clin Immunol Immunopathol 82: 149–156. https://doi.org/10.1006/clin.1996.4293
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Цыбин Ю.О. и др. (2011) Структурный анализ интактных моноклональных антител методом электронно-переносной диссоциации масс-спектрометрии. Anal Chem 83: 8919–8927. https://doi.org/10.1021/ac201293m
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Тайлер-Кросс Р., Ширч В. (1991) Влияние аминокислотной последовательности, буферов и ионной силы на скорость и механизм дезамидирования остатков аспарагина в небольших пептидах.J Biol Chem 266: 22549–22556
CAS
PubMed
Google Scholar
van der Burgt YEM et al (2019) Структурный анализ моноклональных антител с помощью масс-спектрометрии распада MALDI сверхвысокого разрешения в источнике FT-ICR. Anal Chem 91: 2079-2085. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.8b04515
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Vlasak J et al (2009) Идентификация и характеристика деамидирования аспарагина в CDR1 легкой цепи гуманизированного антитела IgG1.Анальная биохимия 392: 145–154. https://doi.org/10.1016/j.ab.2009.05.043
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
фон Pawel-Rammingen U, Johansson BP, Bjorck L (2002) IdeS, новая стрептококковая цистеиновая протеиназа с уникальной специфичностью к иммуноглобулину G. EMBO J 21: 1607–1615. https://doi.org/10.1093/emboj/21.7.1607
Артикул
Google Scholar
Wakankar AA, Borchardt RT, Eigenbrot C, Shia S, Wang YJ, Shire SJ, Liu JL (2007) Изомеризация аспартата в определяющих комплементарность областях двух близкородственных моноклональных антител.Биохимия 46: 1534–1544. https://doi.org/10.1021/bi061500t
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ван В. (1999) Нестабильность, стабилизация и составление жидких белковых фармацевтических препаратов. Int J Pharm 185: 129–188
CAS
PubMed
Google Scholar
Ван В., Сингх С., Зенг Д.Л., Кинг К., Нема С. (2007) Структура, нестабильность и состав антитела.J Pharm Sci 96: 1-26. https://doi.org/10.1002/jps.20727
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Wang Y, Lu Q, Wu SL, Karger BL, Hancock WS (2011a) Характеристика и сравнение дисульфидных связей и паттернов скремблирования в терапевтических моноклональных антителах: использование ЖХ-МС с диссоциацией с переносом электрона. Anal Chem 83: 3133–3140. https://doi.org/10.1021/ac200128d
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Wang WR et al (2011b) Влияние окисления метионина в человеческом Fc IgG1 на период полужизни моноклональных антител в сыворотке крови.Мол Иммунол 48: 860–866. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2010.12.009
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Wardman P, Vonsonntag C (1995) Кинетические факторы, которые контролируют судьбу тиильных радикалов в клетках. Метод Enzymol 251: 31–45. https://doi.org/10.1016/0076-6879(95)51108-3
CAS
Статья
Google Scholar
Wei ZP et al (2007) Идентификация одного остатка триптофана как критического для связывающей активности гуманизированного моноклонального антитела против респираторно-синцитиального вируса.Anal Chem 79: 2797–2805. https://doi.org/10.1021/ac062311j
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Winterbourn CC, Parsons-Mair HN, Gebicki S, Gebicki JM, Davies MJ (2004) Требования к супероксид-зависимому образованию гидропероксида тирозина в пептидах. Biochem J 381: 241–248. https://doi.org/10.1042/BJ20040259
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Wisniewski K, Finnman J, Flipo M, Galyean R, Schteingart CD (2013) О механизме деградации окситоцина и его аналогов в водном растворе.Биополимеры 100: 408–421. https://doi.org/10.1002/bip.22260
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Wohlschlager T et al (2018) Нативная масс-спектрометрия в сочетании с ферментативной диссекцией раскрывает гликоформную гетерогенность биофармацевтических препаратов. Нац Коммуна 9: 1713. https://doi.org/10.1038/s41467-018-04061-7
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Райт А., Бабб В.А., Хокинс С.Л., Дэвис М.Дж. (2002) Опосредованное синглетным кислородом окисление белков: доказательства образования реактивных пероксидов боковых цепей на остатках тирозина.Photochem Photobiol 76: 35–46
CAS
PubMed
Google Scholar
Wu LC, Chen F, Lee SL, Raw A, Yu LX (2017) Обеспечение паритета между брендом и генерическими пептидными продуктами: нормативные и научные аспекты качества синтетических пептидов. Int J Pharm 518: 320–334. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2016.12.051
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Xie M, Vander Velde D, Morton M, Borchardt RT, Schowen RL (1996) pH-индуцированное изменение на стадии, определяющей скорость гидролиза производного Asp / Asn промежуточного продукта циклического имида при деградации белка.J Am Chem Soc 118: 8955–8956
Google Scholar
Xu CF, Chen Y, Yi L, Brantley T, Stanley B, Sosic Z, Zang L (2017) Открытие и характеристика инициированных окислением гистидина перекрестных связей в моноклональных антителах IgG1. Anal Chem 89: 7915–7923. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.7b00860
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ян Дж., Ван С., Лю Дж., Рагани А. (2007) Определение окисления триптофана моноклональных антител с помощью обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии.J Chromatogr A 1156: 174–182. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2007.01.140
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Яширо Х., Уайт Р.К., Юрковская А.В., Форбс М.Д. (2005) Катион-радикал метионина: структурные исследования как функция pH с использованием спектроскопии электронного парамагнитного резонанса с временным разрешением в X- и Q-диапазонах. J. Phys Chem A 109: 5855–5864. https://doi.org/10.1021/jp051551k
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ин Т, Джу TW, Ван Й, Прабакаран П., Димитров Д. С. (2014) Взаимодействие доменов Ch3 и Ch4 IgG1 с FcRn.Фронт Иммунол 5: 146. https://doi.org/10.3389/fimmu.2014.00146
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Yoo EM, Wims LA, Chan LA, Morrison SL (2003) Человеческий IgG2 может образовывать ковалентные димеры. J Immunol 170: 3134–3138. https://doi.org/10.4049/jimmunol.170.6.3134
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Yu L, Vizel A, Huff MB, Young M, Remmele RL, He B (2006) Исследование N-концевой глутаматной циклизации рекомбинантных моноклональных антител при разработке рецептуры.Дж. Фарм Биомед 42: 455–463. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2006.05.008
CAS
Статья
Google Scholar
Zhang XJ, Foote CS, Khan SI (1993) Реакции N-ацилированных индолов с синглетным кислородом. J Org Chem 58: 47–51. https://doi.org/10.1021/jo00053a014
CAS
Статья
Google Scholar
Чжан Х., Цуй В., Гросс М.Л. (2014) Масс-спектрометрия для биофизической характеристики терапевтических моноклональных антител.FEBS Lett 588: 308–317. https://doi.org/10.1016/j.febslet.2013.11.027
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Zhao F, Ghezzo-Schöneich E, Aced GI, Hong JY, Milby T, Schöneich C (1997) Металлическое окисление гистидина в гормоне роста человека — механизм, изотопные эффекты и ингибирование мягким денатурирующим спиртом. J Biol Chem 272: 9019–9029
CAS
PubMed
Google Scholar
ПРАЙМ PubMed | Стратегия O-алкилирования серина и треонина из серинил- и треонинилуксусной кислоты с помощью фотоиндуцированных декарбоксилатных радикальных реакций: связь между серином / треонином и углеводами / аминокислотами в боковой цепи
Citation
Yamamoto, Takashi, et al.«Стратегия O-алкилирования серина и треонина из серинил и треонинилуксусной кислоты с помощью фотоиндуцированных декарбоксилатных радикальных реакций: связь между серином / треонином и углеводами / аминокислотами в боковой цепи». Журнал органической химии, т. 83, нет. 7. 2018. С. 3702-3709.
Ямамото Т., Ивасаки Т., Морита Т. и др. Стратегия O-алкилирования серина и треонина из серинил- и треонинилуксусной кислоты с помощью фотоиндуцированных декарбоксилатных радикальных реакций: связь между серином / треонином и углеводами / аминокислотами в боковой цепи. Дж. Орг. Хим. . 2018; 83 (7): 3702-3709.
Ямамото, Т., Ивасаки, Т., Морита, Т., и Йошими, Ю. (2018). Стратегия O-алкилирования серина и треонина из серинил- и треонинилуксусной кислоты с помощью фотоиндуцированных декарбоксилатных радикальных реакций: связь между серином / треонином и углеводами / аминокислотами в боковой цепи. Журнал органической химии , 83 (7), 3702-3709. https://doi.org/10.1021/acs.joc.8b00061
Ямамото Т. и др.Стратегия O-алкилирования серина и треонина из серинил- и треонинилуксусной кислоты с помощью фотоиндуцированных декарбоксилирующих радикальных реакций: связь между серином / треонином и углеводами / аминокислотами в боковой цепи. J Org Chem. 2018 04 6; 83 (7): 3702-3709. PubMed PMID: 29521503.
TY — JOUR
T1 — Стратегия O-алкилирования серина и треонина из серинил- и треонинилуксусной кислот с помощью фотоиндуцированных декарбоксилатных радикальных реакций: связь между серином / треонином и углеводами / аминокислотами в боковой цепи.AU — Ямамото, Такаши,
AU — Ивасаки, Томоя,
AU — Морита, Тошио,
AU — Йошими, Ясухару,
1 год — 2018/03/15 /
PY — 2018/3/10 / pubmed
PY — 2018/3/10 / medline
PY — 2018/3/10 / entrez
SP — 3702
EP — 3709
JF — Журнал органической химии
JO — J Org Chem
ВЛ — 83
ИС — 7
N2-O-алкилирование производных серина и треонина по гидроксигруппе было достигнуто с использованием фотоиндуцированных декарбоксилатных радикальных реакций серинил- и треонинилуксусной кислот с органическим фотокатализатором без рацемизации в мягких условиях.Фотоиндуцированные декарбоксилирующие радикальные присоединения серинил- и треонинилуксусной кислот к электронодефицитным алкенам обеспечивали связанные серин и треонин с углеводами и аминокислотами в боковой цепи. Кроме того, O-метилирование, содержащее дейтерий, и O-бензилирование серина проводили в аналогичных фотохимических условиях.
SN — 1520-6904
UR — https://www.unboundmedicine.com/medline/citation/29521503/a_strategy_for_o-alkylation_of_serine_and_threonine_from_serinyl_and_threoninyl_acetic_acids_by_photoinduced_decarboxylative_radical_hydical_theaction_theconnection_themes_connection_themes_the_connection_themes_connection_themes_connection_themes_connection_themes_connection_themes_connection_themes_connection_themes_connection_themes_connection_themes_connection_themes_connection_themes_connection_themes_connection_the_connection_the_connection_connection_themes_connection_the_connection_themes_connection_the_connection_themes_connection_the_connections}L2 — https://doi.org/10.1021/acs.joc.8b00061
БД — ПРЕМЬЕР
DP — Unbound Medicine
ER —
Селективная химическая модификация белков | Nature Communications
Walsh, C. T. Посттрансляционная модификация белков: Расширяющийся перечень Natures Roberts and Company Publishers (2006).
de Graaf, A. J., Kooijman, M., Hennink, W. E. & Mastrobattista, E. Неприродные аминокислоты для сайт-специфической конъюгации белков. Биоконъюг.Chem. 20 , 1281–1295 (2009).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Чалкер, Дж. М., Бернардес, Дж. Дж., Я. Л. и Дэвис, Б. Г. Химическая модификация белков цистеина: возможности в химии и биологии. Chem. Азиатский J. 4 , 630–640 (2009).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Слеттен, Э.М. и Бертоцци, С. Р. Биоортогональная химия: ловля селективности в море функциональности. Angew. Chem. Int. Эд. 48 , 6974–6998 (2009).
CAS
Статья
Google Scholar
Прешер, Дж. А., Дубе, Д. Х. и Бертоцци, К. Р. Химическое ремоделирование клеточных поверхностей у живых животных. Природа 430 , 873–877 (2004). Лигирование по Штаудингеру впервые было использовано для химической модификации клеточных поверхностей у мышей; мощный ранний пример химии in vivo .
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Cho, H. et al. Оптимизированная клиническая эффективность гормона роста с расширенным генетическим кодом. Proc. Natl Acad. Sci. США 108 , 9060–9065 (2011).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Витус, Л. С. и Фрэнсис, М. Б. Использование синтетически модифицированных белков для создания новых материалов. В соотв. Chem. Res. 44 , 774–783 (2011).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Шнольцер, М. и Кент, С. Б. Конструирование белков путем объединения незащищенных синтетических пептидов: протеаза, сконструированная на основе остова. Наука 256 , 221–225 (1992).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Zioudrou, C., Wilchek, M. & Patchornik, A. Превращение остатка L-серина в остаток L-цистеина в пептидах. Биохимия 4 , 1811–1822 (1965). Мы считаем эту статью ключевой в разработке концепции синтеза конвергентных белков; способность селективно «химически мутировать» / «постэкспрессировать мутировать» один остаток в другой имеет давние последствия .
CAS
Статья
Google Scholar
Полгар, Л.И Бендер, М. Л. Новый фермент, содержащий синтетически сформированный активный центр. Тиол-субтилизин. J. Am. Chem. Soc. 88 , 3153–3154 (1966).
CAS
Статья
Google Scholar
Neet, K. E. и Koshland, D. E. Jr. Превращение серина в активном центре субтилизина в цистеин: «химическая мутация». Proc. Natl Acad. Sci. США 56 , 1606–1611 (1966).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Чалкер, Дж.М. и Дэвис, Б. Г. Химический мутагенез: селективное постэкспрессионное взаимопревращение аминокислотных остатков белка. Curr. Opin. Chem. Биол. 14 , 781–789 (2010).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Хермансон, Г. Т. Методы биоконъюгирования 2-е изд. Academic Press, Inc. (2008).
Crankshaw, M. W. & Grant, G.A. Модификация цистеина Wiley (1996).
Кларк П. И. и Лоу Г. Химические мутации папаина. Приготовление Ser 25- и Gly 25-Papain. J. Chem. Soc. Chem. Commun. 24 , 923–924 (1977).
Артикул
Google Scholar
Годдард, Д. Р. и Михаэлис, Л. Производные кератина. J. Biol. Chem. 112 , 361–371 (1935).
CAS
Google Scholar
Ланделл, Н.И Шрайтмюллер, Т. Подготовка образцов для пептидного картирования — перспектива фармацевтического контроля качества. Анал. Biochem. 266 , 31–47 (1999).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Стефанопулос, Н., Тонг, Дж. Дж., Сяо, С. К. и Фрэнсис, М. Б. Капсиды вирусов с модифицированной двойной поверхностью для направленной доставки фотодинамических агентов к раковым клеткам. АСУ Нано 4 , 6014–6020 (2010).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Smith, M.E.B. et al. Модификация белков, биоконъюгация и образование дисульфидных мостиков с использованием броммалеимидов. J. Am. Chem. Soc. 132 , 1960–1965 (2010).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Беттинг, Д. Дж., Кафи, К., Абдоллахи-фард, А., Hurvitz, S. A. & Timmerman, J. M. Конъюгаты опухолевого антигена с белком-носителем на основе сульфгидрила стимулируют превосходный противоопухолевый иммунитет против В-клеточных лимфом. J. Immunol. 181 , 4131–4140 (2008).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Чжан Ю., Бхатт В. С., Сан Г., Ван П. Г. и Палмер А. Ф. Сайт-селективное гликозилирование гемоглобина на Cys beta93. Биоконъюг. Chem. 19 , 2221–2230 (2008).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Шен, Б.-Кв. и другие. Сайт конъюгации модулирует стабильность in vivo и терапевтическую активность конъюгатов антитело-лекарственное средство. Nat. Biotechnol. 30 , 184–189 (2012).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Натани Р.I. et al. Обратимое аффинное мечение белков с использованием реагентов на основе броммалеимида. Org. Biomol. Chem. 11 , 2408–2411 (2013).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Moody, P. et al. Биоконъюгаты, связанные с броммалеимидом, расщепляются в клетках млекопитающих. Chembiochem 13 , 39–41 (2012).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Хофер, Т., Thomas, J. D., Terrence, R., Burke, J. и Rader, C. Сконструированный селеноцистеин определяет уникальный класс производных антител. Proc. Natl Acad. Sci. США 105 , 12451–12456 (2008).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Simon, M. D. et al. Сайт-специфическая установка аналогов метил-лизина в рекомбинантные гистоны. Cell 128 , 1003–1012 (2007).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Чаттерджи, К. и Мьюир, Т. В. Химические подходы к изучению модификаций гистонов. J. Biol. Chem. 285 , 11045–11050 (2010).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Кунду Р. и Болл З. Т. Модификация цистеина, катализируемая родием, с помощью диазореагентов. Chem. Commun. 2 , 4166–4168 (2012).
Google Scholar
Bös, C., Lorenzen, D. & Braun, V. Специфическая in vivo мечение белковых петель, экспонируемых на клеточной поверхности: реактивные цистеины в прогнозируемой петле гейтирования маркируют сайт связывания феррихрома и лиганд-индуцированный конформационное изменение белка FhuA Escherichia coli . J. Bacteriol. 180 , 605–613 (1998).
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Kenyon, G. L. & Bruice, T. W. Methods Enzymol. 47 , 407–430 (1977).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Berglund, P. et al. Химическая модификация цистеиновых мутантов subtilisin bacillus lentus может создавать лучшие катализаторы, чем фермент дикого типа. J. Am. Chem. Soc. 119 , 5265–5266 (1997). Дальновидный пример использования методов сайт-селективной модификации для создания логического набора гомогенных и точных вариантов фермента; здесь каталитическая активность модулировалась прямым образом .
CAS
Статья
Google Scholar
Дэвис, Б.Г., Моган, М.А.Т., Грин, М.П., Ульман, А. и Джонс, Дж. Б. Гликометантиосульфонаты: мощные реагенты для гликозилирования белков. Асимметрия тетраэдра 11 , 245–262 (2000).
CAS
Статья
Google Scholar
Gamblin, D. P. et al. Гликозилфенилтиосульфонаты (глико-ФТС): новые реагенты для синтеза гликопротеинов. Org. Biomol. Chem. 1 , 3642–3644 (2003).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
ван Кастерен, С.И., Крамер, Х. Б., Гамблин, Д. П. и Дэвис, Б. Г. Сайт-селективное гликозилирование белков: создание синтетических гликопротеинов. Nat. Protoc. 2 , 3185–3194 (2007).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
van Kasteren, S. I. et al. Расширение разнообразия химических модификаций белков делает возможной посттрансляционную мимикрию. Природа 446 , 1105–1109 (2007). Были применены две взаимно совместимые реакции для создания различных сайт-селективных модификаций (S – S и триазол) в димодифицированных белках; они действовали как эффективные имитаторы естественных модификаций in vitro и in vivo .
ADS
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Gamblin, D. P. et al. Glyco-SeS: селененилсульфид-опосредованное гликоконъюгирование белков — новая стратегия посттрансляционной модификации. Angew. Chem. Int. Эд. 43 , 828–833 (2004).
CAS
Статья
Google Scholar
Gamblin, D. P. et al. Химическое сайт-селективное пренилирование белков. Мол. Биосист. 4 , 558–561 (2008).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Smith, M. L. et al. Модифицированные частицы вируса табачной мозаики в качестве каркаса для отображения белковых антигенов для вакцин. Вирусология 348 , 475–488 (2006).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Kalkhof, S. & Sinz, A. Возможности и недостатки химического сшивания с амино-реактивными сложными эфирами N-гидроксисукцинимида. Анал. Биоанал. Chem. 392 , 305–312 (2008).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Накамура Т., Кавай, Ю., Китамото, Н., Осава, Т. и Като, Ю. Ковалентная модификация остатков лизина аллилизотиоцианатом в физиологических условиях: вероятное преобразование изотиоцианата из тиола в амин. Chem. Res. Toxicol. 22 , 536–542 (2009).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Tanaka, K. et al. Протокол в масштабе субмикрограмм для визуализации ПЭТ на основе биомолекул путем быстрой 6pi-азаэлектроциклизации: визуализация зависимого от сиаловой кислоты резидентности гликопротеинов в кровообращении. Angew. Chem. Int. Эд. 47 , 102–105 (2008).
CAS
Статья
Google Scholar
Джентофт, Н. и Дирборн, Д. Г. Мечение белков путем восстановительного метилирования с использованием цианоборгидрида натрия. J. Biol. Chem. 254 , 4359–4365 (1979).
CAS
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
МакФарланд, Дж.М. и Фрэнсис, М. Б. Восстановительное алкилирование белков с использованием гидрирования с переносом иридиевого катализатора. J. Am. Chem. Soc. 127 , 13490–13491 (2005).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Доусон П. Э., Мьюир Т. У., Кларк-Льюис И. и Кент С. Б. Синтез белков путем нативного химического лигирования. Наука 266 , 776–778 (1994). Эта статья создала эталон для использования образования нативной амидной связи в условиях, совместимых с белком (нативное химическое лигирование), для соединения двух синтетических пептидов с образованием полноразмерного белка; яркий пример синтеза белка посредством линейной сборки .
ADS
CAS
Статья
Google Scholar
Кент, С. Б. Х. Полный химический синтез белков. Chem. Soc. Ред. 38 , 338–351 (2009).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Виланд, Т., Бокельманн, Э., Бауэр, Л., Ланг, Х. У. и Лау, Х. Убер Пептидсинтезен. 8. Mitteilung Bildung von S-haltingen Peptiden durch intromolekulare Wanderung von Aminoacylresten. Liebigs Ann. Chem. 583 , 129–149 (1953).
CAS
Статья
Google Scholar
Нильссон, Б. Л., Зёлльнер, М. Б. и Рейнс, Р. Т. Химический синтез белков. Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 34 , 91–118 (2005).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Доусон, П.E. Нативное химическое лигирование в сочетании с десульфуризацией и деселенизацией: общая стратегия химического синтеза белка. Isr. J. Chem. 51 , 862–867 (2011).
CAS
Статья
Google Scholar
Мьюир, Т. В., Сонди, Д. и Коул, П. А. Лигирование экспрессированных белков: общий метод инженерии белков. Proc. Natl Acad. Sci. США 95 , 6705–6710 (1998).
ADS
CAS
Статья
Google Scholar
Вила-Перелло, М.И Мьюир, Т. В. Биологические применения белкового сплайсинга. Ячейка 143 , 191–200 (2010).
Артикул
CAS
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Комаров, А. Г., Линн, К. М., Деверо, Дж. Дж. И Валияветил, Ф. И. Модульная стратегия полусинтеза К + канала: исследование взаимодействий спирали поры. ACS Chem. Биол. 4 , 1029–1038 (2009).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Vila-Perelló, M. et al. Оптимизированное лигирование экспрессированного белка с использованием расщепленных интеинов. J. Am. Chem. Soc. 135 , 286–292 (2013).
Артикул
CAS
PubMed
Google Scholar
Ren, H. et al. Биосовместимая реакция конденсации для мечения концевых остатков цистеина на белках. Angew. Chem. Int. Эд. 48 , 9658–9662 (2009).
CAS
Статья
Google Scholar
Staudinger, H. & Meyer, J. Über neue organische Phosphorverbindungen III. Фосфинметиленпроизводное и фосфинимин. Helv. Чим. Acta 2 , 635–646 (1919).
CAS
Статья
Google Scholar
Саксон, Э.И Бертоцци, С. Р. Конструирование клеточной поверхности с помощью модифицированной реакции Штаудингера. Наука 287 , 2007–2010 (2000).
ADS
CAS
Статья
Google Scholar
Kiick, K. L., Saxon, E., Tirrell, D. A. & Bertozzi, C. R. Включение азидов в рекомбинантные белки для хемоселективной модификации лигированием по Штаудингеру. Proc. Natl Acad. Sci. США 99 , 19–24 (2002).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Цао, М.-Л., Тиан, Ф. и Шульц, П.Г. Селективная модификация Штаудингера белков, содержащих п-азидофенилаланин. Chembiochem 6 , 2147–2149 (2005).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
van Berkel, S. S., van Eldijk, M. B. & van Hest, J.Лигирование К. М. Штаудингера как метод биоконъюгации. Angew. Chem. Int. Эд. 50 , 8806–8827 (2011).
CAS
Статья
Google Scholar
Lemieux, G. a., De Graffenried, C. L. & Bertozzi, C. R. Флуорогенный краситель, активируемый лигированием по Штаудингеру. J. Am. Chem. Soc. 125 , 4708–4709 (2003).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Наганатан, С., Йе, С., Сакмар, Т. П. и Хубер, Т. Сайт-специфическое мечение эпитопов рецепторов, связанных с G-белком, путем биоортогональной модификации генетически кодируемой неприродной аминокислоты. Биохимия 52 , 1028–1036 (2013).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Шиманский, В., Ву, Б., Полони, К., Янссен, Д. Б. и Феринга, Б. Л. Азобензенские фотопереключатели для лигирования Штаудингера-Бертоцци. Angew.Chem. Int. Эд. 125 , 2122–2126 (2013).
Артикул
Google Scholar
Нильссон, Б. Л., Кисслинг, Л. Л. и Рейнс, Р. Т. Штаудингер. Лигирование: пептид из тиоэфира и азида. Org. Lett. 2 , 1939–1941 (2000).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Саксон, Э., Армстронг, Дж. И. и Бертоцци, К.Р. А. «Бесследное» лигирование Штаудингера для хемоселективного синтеза амидных связей. Org. Lett. 2 , 2141–2143 (2000).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Doores, K. J. et al. Прямое лигирование гликозил-аспарагина со снятой защитой. Chem. Commun. 7 , 1401–1403 (2006).
Артикул
CAS
Google Scholar
Бернардес, Г.J.L., Linderoth, L., Doores, K.J., Boutureira, O. & Davis, B.G. Сайт-селективное бесследное лигирование по Штаудингеру для синтеза гликопротеина обнаруживает объем и ограничения. Chembiochem 12 , 1383–1386 (2011).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Serwa, R. et al. Хемоселективная реакция Штаудингера-фосфита азидов для фосфорилирования белков. Angew. Chem. Int. Эд. 48 , 8234–8239 (2009).
CAS
Статья
Google Scholar
Агард, Н. Дж., Баскин, Дж. М., Прешер, Дж. А., Ло, А. и Бертоцци, К. Р. Сравнительное исследование биоортогональных реакций с азидами. ACS Chem. Биол. 1 , 644–648 (2006).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ростовцев, В.В., Грин, Л. Г., Фокин, В. В., Шарплесс, К. Б. Постадийный процесс циклоприсоединения huisgen: региоселективное «лигирование» азидов и концевых алкинов, катализируемое медью (I). Angew. Chem. Int. Эд. 41 , 2596–2599 (2002).
CAS
Статья
Google Scholar
Tornøe, CW, Christensen, C. & Meldal, M. Пептидотриазолы на твердой фазе: [1,2,3] -триазолы регионоспецифическими медь (i) -катализированными 1,3-диполярными циклоприсоединениями концевых алкинов к азиды. J. Org. Chem. 67 , 3057–3064 (2002).
Артикул
CAS
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Huisgen, R. 1,3-Диполярные циклоприсоединения в прошлом и будущем. Angew. Chem. Int. Эд. 2 , 566–598 (1963).
Google Scholar
Dimroth, O. Synthesen mit Diazobenzolimid. Ber. Dtsch. Chem.Ges. 36 , 909–913 (1903).
CAS
Статья
Google Scholar
Michael, A. Ueber die Einwirkung von Diazobenzolimid auf Acetylendicarbonsäuremethylester. J. Prakt. Chem. 48 , 94–95 (1893).
Артикул
Google Scholar
Meldal, M. & Tornøe, C. W. Катализируемое медью азид-алкиновое циклоприсоединение. Chem.Ред. 108 , 2952–3015 (2008).
CAS
Статья
Google Scholar
Himo, F. et al. Катализируемый медью (I) синтез азолов. Исследование DFT предсказывает беспрецедентную реакционную способность и промежуточные соединения. J. Am. Chem. Soc. 127 , 210–216 (2005).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Wang, Q. et al. Биоконъюгация азид-алкиновым [3 + 2] циклоприсоединением, катализируемым медью (I). J. Am. Chem. Soc. 125 , 3192–3193 (2003).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Speers, A.E., Adam, G.C. & Cravatt, B.F. Профилирование белков на основе активности in vivo с использованием катализируемого медью (i) азид-алкинового [3 + 2] циклоприсоединения. J. Am. Chem. Soc. 125 , 4686–4687 (2003).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Дейтерс, А.и другие. Добавление аминокислот с новой реакционной способностью к генетическому коду Saccharomyces cerevisiae . J. Am. Chem. Soc. 125 , 11782–11783 (2003).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Link, J. & Tirrell, D. Мечение поверхности клетки Escherichia coli посредством катализируемого медью (I) [3 + 2] циклоприсоединения. J. Am. Chem. Soc. 125 , 11164–11165 (2003). CuAAC, используемый для селективной модификации белков на поверхности клеток (E. coli) .
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Линк, Дж., Винк, М. К. С. и Тиррелл, Д. Представление и определение функциональности азидов в поверхностных белках бактериальных клеток. J. Am. Chem. Soc. 126 , 10598–10602 (2004).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Дитрих Д.С., Линк, Дж., Грауман, Дж., Тиррелл, Д. и Шуман, Э. М. Селективная идентификация вновь синтезированных белков в клетках млекопитающих с использованием биоортогональной неканонической аминокислотной метки (BONCAT). Proc. Natl Acad. Sci. США 103 , 9482–9487 (2006).
ADS
CAS
Статья
Google Scholar
Link, J. et al. Открытие активности аминоацил-тРНК синтетазы посредством отображения неканонических аминокислот на клеточной поверхности. Proc. Natl Acad. Sci. США 103 , 10180–10185 (2006).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Kennedy, D.C. et al. Клеточные последствия комплексов меди, используемых для катализа биоортогональных щелчков. J. Am. Chem. Soc. 133 , 17993–18001 (2011).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Hong, V., Стейнмец, Н. Ф., Манчестер, М. и Финн, М. Г. Мечение живых клеток с помощью щелочной химии алкинов и азидов, катализируемой медью. Биоконъюг. Chem. 21 , 1912–1916 (2010).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Рэй, Т. Д., Шмидт, П. Дж., Пуфаль, Р. А., Кулотта, В. К. и В. О’Халлоран, Т. Необнаруживаемая внутриклеточная свободная медь: потребность в шапероне меди для супероксиддисмутазы. Наука 284 , 805–808 (1999).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Сориано Дель Амо, Д. и др. Биосовместимые катализаторы меди (I) для in vivo визуализации гликанов. J. Am. Chem. Soc. 132 , 16893–16899 (2010).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Уттамапинант, К.и другие. Быстрая, совместимая с клетками химия щелчков с хелатирующими медь азидами для биомолекулярного мечения. Angew. Chem. Int. Эд. 51 , 5852–5856 (2012).
CAS
Статья
Google Scholar
Deiters, A., Cropp, T. A., Summerer, D., Mukherji, M. & Schultz, P. G. Сайт-специфическое ПЭГилирование белков, содержащих неприродные аминокислоты. Bioorg. Med. Chem. Lett. 14 , 5743–5745 (2004).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Howden, A. J. M. et al. QuaNCAT: количественная оценка динамики протеома в первичных клетках. Nat. Методы 10 , 343–346 (2013).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Ribeiro-Viana, R. et al. Вирусоподобные гликодендринаночастицы, демонстрирующие квазиэквивалентную вложенную поливалентность на гликопротеиновых платформах, эффективно блокируют вирусную инфекцию. Nat. Commun. 3 , 1303 (2012).
Артикул
CAS
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Агард, Н. Дж., Прешер, Дж. А. И Bertozzi, C.R. Штамм-промотируемое [3 + 2] азид-алкиновое циклоприсоединение для ковалентной модификации биомолекул в живых системах. J. Am. Chem. Soc. 126 , 15046–15047 (2004).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Виттиг, Г.& Krebs, A. Zur Existenz niedergliedriger cycloalkine, I. Chem. Бер. 94 , 3260–3275 (1961).
CAS
Статья
Google Scholar
Баскин, Дж. М. и др. Щелочная химия без содержания меди для динамической визуализации in vivo . Proc. Natl Acad. Sci. США 104 , 16793–16797 (2007).
ADS
CAS
Статья
Google Scholar
Нин, Х., Guo, J., Wolfert, M. A. & Boons, G.-J. Визуализация метаболически меченных гликоконъюгатов живых клеток с помощью свободных от меди и быстрых циклоприсоединений huisgen. Angew. Chem. Int. Эд. 47 , 2253–2255 (2008).
CAS
Статья
Google Scholar
Лафлин, С. Т., Баскин, Дж. М., Амахер, С. Л. и Бертоцци, С. Р. In vivo визуализация ассоциированных с мембранами гликанов у развивающихся рыбок данио. Наука 320 , 664–667 (2008).
ADS
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Джуэтт, Дж. К., Слеттен, Э. М. и Бертоцци, К. Р. Быстрая химия щелчков, не содержащая Cu, с легко синтезируемыми биарилазациклооктинонами. J. Am. Chem. Soc. 132 , 3688–3690 (2010).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Доммерхольт, Дж.и другие. Легкодоступные бициклононины для биоортогональной маркировки и трехмерной визуализации живых клеток. Angew. Chem. Int. Эд. 49 , 9422–9425 (2010).
CAS
Статья
Google Scholar
Plass, T., Milles, S., Koehler, C., Schultz, C. & Lemke, E. A. Генетически закодированная химия щелчков, не содержащая меди. Angew. Chem. Int. Эд. 50 , 3878–3881 (2011).
CAS
Статья
Google Scholar
Ланг, К.и другие. Генетическое кодирование бициклононинов и трансциклооктенов для сайт-специфической маркировки белков in vitro и в живых клетках млекопитающих с помощью быстрых флуорогенных реакций Дильса-Альдера. J. Am. Chem. Soc. 134 , 10317–10320 (2012).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Чанг, П. В. и др. Щелочная химия без меди у живых животных. Proc. Natl Acad.Sci. США 107 , 1821–1826 (2010).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Lo Conte, M. et al. Многомолекулярная реакция сывороточного альбумина может происходить посредством тиолинового связывания. Chem. Commun. 47 , 11086–11088 (2011).
CAS
Статья
Google Scholar
Блэкман, М. Л., Ройзен, М.И Фокс, Дж. М. Лигирование тетразина: быстрое биоконъюгирование, основанное на реактивности Дильса-Альдера с обращенными электронами. J. Am. Chem. Soc. 130 , 13518–13519 (2008). Ранний пример реакций Дильса-Альдера с обратной потребностью электронов, разработанный для модификации белков; реакция, которая кажется одной из самых быстрых в контексте модификации белков .
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Деварадж, Н.К., Вайследер, Р. и Хильдербранд, С. Циклоприсоединения на основе тетразина: применение для предварительно нацеленной визуализации живых клеток. Биоконъюг. Chem. 19 , 2297–2299 (2008).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Тейлор М. Т., Блэкман М. Л., Дмитренко О. и Фокс Дж. М. Дизайн и синтез высокореактивных диенофилов для лигирования тетразин-транс-циклооктен. J. Am. Chem. Soc. 133 , 9646–9649 (2011).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Деварадж, Н. К. и Вайследер, Р. Биомедицинские применения тетразиновых циклоприсоединений. В соотв. Chem. Res. 44 , 816–827 (2011).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Сейчик, Дж.L. et al. Генетически кодируемая аминокислота тетразин направляет быстрое сайт-специфическое in vivo биоортогональное лигирование с трансциклооктенами. J. Am. Chem. Soc. 134 , 2898–2901 (2012).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Lang, K. et al. Генетически кодируемый норборнен направляет сайт-специфическое мечение клеточного белка посредством быстрой биоортогональной реакции. Nat. Chem. 4 , 298–304 (2012).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Plass, T. et al. Аминокислоты для реакций Дильса-Альдера в живых клетках. Angew. Chem. Int. Эд. 51 , 4166–4170 (2012).
CAS
Статья
Google Scholar
Kaya, E. et al. Генетически кодируемая аминокислота норборнен для мягкой и селективной модификации белков в щелочной реакции без содержания меди. Angew. Chem. Int. Эд. 51 , 4466–4469 (2012).
CAS
Статья
Google Scholar
Лян, Ю., Макки, Дж. Л., Лопес, С. А., Лю, Ф. и Хоук, К. Н. Контроль и дизайн взаимной ортогональности в биоортогональных циклоприсоединениях. J. Am. Chem. Soc. 134 , 17904–17907 (2012).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Карвер, М.R., Weissleder, R. & Hilderbrand, S.A. Пары биоортогональных реакций обеспечивают одновременную, селективную, множественную визуализацию. Angew. Chem. Int. Эд. 51 , 920–922 (2012).
CAS
Статья
Google Scholar
Song, W., Wang, Y., Qu, J., Madden, M. и Lin, Q. Фотоиндуцируемая реакция 1,3-диполярного циклоприсоединения для быстрой селективной модификации тетразолсодержащих белков. Angew.Chem. Int. Эд. 47 , 2832–2835 (2008).
CAS
Статья
Google Scholar
Сонг, В., Ван, Ю., Ку, Дж. И Лин, К. Селективная функционализация генетически кодируемого алкенсодержащего белка посредством «химии фотокликов» в бактериальных клетках. J. Am. Chem. Soc. 130 , 9654–9655 (2008).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ю. З., Pan, Y., Wang, Z., Wang, J. & Lin, Q. Генетически кодируемый циклопропен направляет быстрое мечение белков в клетках млекопитающих, опосредованное фотохимическим щелчком. Angew. Chem. Int. Эд. 51 , 10600–10604 (2012).
CAS
Статья
Google Scholar
Wang, J. et al. Биосинтетический путь к химии фотокликов на белках. J. Am. Chem. Soc. 132 , 14812–14818 (2010).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Антос, Дж.М. и Фрэнсис, М. Б. Катализируемые переходными металлами методы сайт-селективной модификации белка. Curr. Opin. Chem. Биол. 10 , 253–262 (2006).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Дибовски, Х. и Шмидтхен, Ф. П. Биоконъюгирование пептидов с помощью катализируемого палладием кросс-сочетания С-С в воде. Angew. Chem. Int. Эд. 37 , 476–478 (1998).
CAS
Статья
Google Scholar
Оджида, А., Цуцуми, Х., Касаги, Н. и Хамачи, И. Сочетание Сузуки для модификации белков. Tetrahedron Lett. 46 , 3301–3305 (2005).
CAS
Статья
Google Scholar
Санторо, С. В., Ван, Л., Герберих, Б., Кинг, Д. С. и Шульц, П. Г. Эффективная система для эволюции специфичности аминоацил-тРНК синтетазы. Nat. Biotechnol. 20 , 1044–1048 (2002).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Кодама, К.и другие. Региоселективное образование углерод-углеродных связей в белках с палладиевым катализом; новая химия белков по металлоорганической химии. Chembiochem 7 , 134–139 (2006).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Kodama, K. et al. Сайт-специфическая функционализация белков палладиеорганическими реакциями. Chembiochem 8 , 232–238 (2007).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Brustad, E.и другие. Генетически кодируемая боронатсодержащая аминокислота. Angew. Chem. Int. Эд. 47 , 8220–8223 (2008).
CAS
Статья
Google Scholar
Чалкер, Дж. М., Вуд, С. С. и Дэвис, Б. Г. Удобный катализатор для кросс-сочетания Сузуки-Мияура на водной и белковой основе. J. Am. Chem. Soc. 131 , 16346–16347 (2009). Система лигандов с высокой биосовместимостью, разработанная для эффективной модификации белков за счет образования связи C – C, опосредованного палладием, что позволяет применять одну из наиболее распространенных реакций в органической химии и биологии .
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Спайсер, К. Д. и Дэвис, Б. Г. Палладий-опосредованная сайт-селективная модификация белка Сузуки-Мияуры в генетически кодируемых арилгалогенидах. Chem. Commun. 47 , 1698–1700 (2011).
CAS
Статья
Google Scholar
Ван, Ю.-С. и другие. Разработка de novo пирролизил-тРНК синтетазы для генетического включения L-фенилаланина и его производных. Мол. Биосист. 7 , 714–717 (2011).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Спайсер, К. Д., Тример, Т. и Дэвис, Б. Г. Мечение клеточной поверхности, опосредованное палладием. J. Am. Chem. Soc. 134 , 800–803 (2012).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Спайсер, К. Д. и Дэвис, Б.G. Переписывание бактериального гликокаликса посредством кросс-сочетания Сузуки-Мияура. Chem. Commun. 49 , 2747–2749 (2013).
CAS
Статья
Google Scholar
Ли, Н., Лим, Р. К. В., Эдвардраджа, С. и Лин, К. Кросс-сочетания Соногашира без меди для функционализации белков, кодируемых алкинами, в водной среде и в бактериальных клетках. J. Am. Chem. Soc. 133 , 15316–15319 (2011).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Dumas, A. et al. Самолигандированное связывание Сузуки-Мияуры для сайт-селективного пегилирования белка. Angew. Chem. Int. Эд. 52 , 3916–3921 (2013).
CAS
Статья
Google Scholar
Gao, Z., Gouverneur, V. & Davis, B.G. Усиленное водное связывание Сузуки-Мияуры позволяет сайт-специфичное мечение полипептида 18F. J. Am. Chem. Soc. 135 , 13612–13615 (2013).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Li, J. et al. Свободное от лиганда палладиевое мечение сайт-специфических белков внутри грамотрицательных бактериальных патогенов. J. Am. Chem. Soc. 135 , 7330–7338 (2013).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Линь, Ю.А., Чалкер, Дж. М., Флойд, Н., Бернардес, Дж. Дж. Л. и Дэвис, Б. Г. Аллилсульфиды являются привилегированными субстратами в водном перекрестном метатезисе: применение для сайт-селективной модификации белка. J. Am. Chem. Soc. 130 , 9642–9643 (2008).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Лин, Ю. А. и Дэвис, Б. Г. Эффект аллильного халькогена в метатезе олефинов. Beilstein J. Org. Chem. 6 , 1219–1228 (2010).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Чалкер, Дж. М., Лин, Ю. А., Бутурейра, О. и Дэвис, Б. Г. Включение метатезиса олефинов на белках: химические методы установки S-аллилцистеина. Chem. Commun. 3714–3716 (2009).
Лин, Ю. А., Чалкер, Дж. М. и Дэвис, Б. Г. Кросс-метатезис олефинов на белках: исследование эффектов аллильных халькогенов и руководящие принципы в выборе партнера для метатезиса. J. Am. Chem. Soc. 132 , 16805–16811 (2010).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Lin, Y.A. et al. Быстрый перекрестный метатезис для модификаций белков за счет химического доступа к se-allyl selenocysteine в белках. J. Am. Chem. Soc. 135 , 12156–12159 (2013).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Антос, Дж.М. и Фрэнсис, М. Б. Селективная модификация триптофана карбеноидами родия в водном растворе. J. Am. Chem. Soc. 126 , 10256–10257 (2004).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Антос, Дж. М., МакФарланд, Дж. М., Иавароне, А. Т. и Фрэнсис, М. Б. Хемоселективное мечение триптофаном карбеноидами родия при умеренном pH. J. Am. Chem. Soc. 131 , 6301–6308 (2009).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Попп Б. В. и Болл З. Т. Структурно-селективная модификация ароматических боковых цепей с катализаторами на основе диродиевых металлопептидов. J. Am. Chem. Soc. 132 , 6660–6662 (2010).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Chen, Z. et al. Каталитическая модификация белков металлопептидами диродия: специфичность в разработанных и природных системах. J. Am. Chem. Soc. 134 , 10138–10145 (2012).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Алам, Дж., Келлер, Т. Х. и Ло, Т.-П. Функционализация пептидов и белков альдольной реакцией Мукаямы. J. Am. Chem. Soc. 132 , 9546–9548 (2010).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Хан, М.-J., Xiong, D.-C. & Е, X.-S. Включение реакции Виттига на сайт-специфическую модификацию белка. Chem. Commun. 48 , 11079–11081 (2012).
CAS
Статья
Google Scholar
Ван Л., Чжан З., Брок А. и Шульц П. Г. Добавление кето-функциональной группы к генетическому коду Escherichia coli . Proc. Natl Acad. Sci. США 100 , 56–61 (2003).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Дирксен, А.И Доусон, П. Е. Быстрое лигирование оксима и гидразона с ароматическими альдегидами для биомолекулярного мечения. Биоконъюг. Chem. 19 , 2543–2548 (2008).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Геогеган, К. Ф. и Стро, Дж. Г. Сайт-направленная конъюгация непептидных групп с пептидами и белками посредством периодатного окисления 2-аминоспирта. Применение к модификации N-концевого серина. Биоконъюг. Chem. 3 , 138–146 (1992).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Гилмор, Дж. М., Шек, Р. А., Эссер-Кан, А. П., Джоши, Н. С. и Фрэнсис, М. Б. Модификация N-концевого белка посредством реакции биомиметического трансаминирования. Angew. Chem. Int. Эд. 45 , 5307–5311 (2006).
CAS
Статья
Google Scholar
Шек, Р.А., Дедео, М. Т., Явароне, А. Т. и Фрэнсис, М. Б. Оптимизация реакции биомиметического трансаминирования. J. Am. Chem. Soc. 130 , 11762–11770 (2008).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Шек Р. А. и Фрэнсис М. Б. Региоселективное мечение антител посредством N-концевого трансаминирования. ACS Chem. Биол. 2 , 247–251 (2007).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Каррико, З.M. et al. Конечная маркировка нитчатого фага для создания агентов визуализации маркеров рака. ACS Nano 6 , 6675–6680 (2012).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Корниш, В. В., Хан, К. М. и Шульц, П. Г. Сайт-специфическая модификация белка с использованием кетонового маркера. J. Am. Chem. Soc. 118 , 8150–8151 (1996).
CAS
Статья
Google Scholar
Чжан, З.и другие. Новая стратегия сайт-специфической модификации белков in vivo . Биохимия 42 , 6735–6746 (2003).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Chin, J. W. et al. Расширенный генетический код эукариот. Наука 301 , 964–967 (2003).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Хуанг, Ю.и другие. Генетическое включение алифатической кетосодержащей аминокислоты в белки для их сайт-специфических модификаций. Bioorg. Med. Chem. Lett. 20 , 878–880 (2010).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Цзэн, Х., Се, Дж. И Шульц, П. Г. Генетическое введение дикетонсодержащей аминокислоты в белки. Bioorg. Med. Chem. Lett. 16 , 5356–5359 (2006).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Каррико, И. С., Карлсон, Б. Л. и Бертоцци, С. Р. Введение генетически кодируемых альдегидов в белки. Nat. Chem. Биол. 3 , 321–322 (2007).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Лю, Х., Ван, Л., Брок, А., Вонг, К.-Х. И Шульц, П. Г. Метод создания миметиков гликопротеина. J. Am. Chem. Soc. 125 , 1702–1703 (2003).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ye, S. et al. Сайт-специфическое включение кетоаминокислот в функциональные рецепторы, связанные с G-белком, с использованием мутагенеза неприродных аминокислот. J. Biol. Chem. 283 , 1525–1533 (2008).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Хатчинс, Б.M. et al. Сайт-специфическое связывание и стерически контролируемое образование fab-фрагментов мультимерных антител с неприродными аминокислотами. J. Mol. Биол. 406 , 595–603 (2011).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Hudak, J. E. et al. Синтез гетеробифункциональных слияний белков с использованием щелочной химии без меди и альдегидной метки. Angew. Chem. Int. Эд. 51 , 4161–4165 (2012).
CAS
Статья
Google Scholar
Kim, C.H. et al. Синтез биспецифических антител с использованием генетически кодируемых неприродных аминокислот. J. Am. Chem. Soc. 134 , 9918–9921 (2012).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Брустад, Э. М., Лемке, Э., Schultz, P. G. & Deniz, A. Общий и эффективный метод сайт-специфического двойного мечения белков для резонансного переноса энергии флуоресценции одиночных молекул. J. Am. Chem. Soc. 130 , 17664–17665 (2008).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Сасаки, Т., Кодама, К., Сузуки, Х., Фукудзава, С. и Тачибана, К. Мечение N-конца белков с помощью реакции Пикте-Шпенглера. Bioorg. Med. Chem. Lett. 18 , 4550–4553 (2008).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Агарвал П., Вейден, Дж. В. Д., Слеттен, Э. М., Рабука, Д. и Бертоцци, К. Р. Лигирование Пикте-Шпенглера для химической модификации белка. Proc. Natl Acad. Sci. США 110 , 46–51 (2012).
ADS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ван Дж., Шиллер, С. М. и Шульц, П. Г. Биосинтетический путь к дегидроаланин-содержащим белкам. Angew. Chem. Int. Эд. 119 , 6973–6975 (2007).
Артикул
Google Scholar
Гуо, Дж., Ван, Дж., Ли, Дж. С. и Шульц, П. Г. Сайт-специфическое включение аналогов метил- и ацетил-лизина в рекомбинантные белки. Angew. Chem. Int. Эд. 120 , 6499–6501 (2008).
Артикул
Google Scholar
Бернардес, Г.Дж. Л., Чалкер, Дж. М., Эррей, Дж. К. и Дэвис, Б. Г. Легкое превращение цистеина и алкилцистеинов в дегидроаланин на поверхности белков: универсальный и переключаемый доступ к функционализированным белкам. J. Am. Chem. Soc. 130 , 5052–5053 (2008).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Chalker, J. M. et al. Методы превращения цистеина в дегидроаланин на пептидах и белках. Chem. Sci. 2 , 1666–1676 (2011).
CAS
Статья
Google Scholar
Чалкер, Дж. М., Лерчер, Л., Роуз, Н. Р., Шофилд, К. Дж. И Дэвис, Б. Г. Превращение цистеина в дегидроаланин обеспечивает доступ к синтетическим гистонам, несущим различные посттрансляционные модификации. Angew. Chem. Int. Эд. 51 , 1835–1839 (2012).
CAS
Статья
Google Scholar
Ван З.U. et al. Простой метод синтеза гистонов с имитацией посттрансляционной модификации. Биохимия 51 , 5232–5234 (2012).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Флойд, Н., Виджаякришнан, Б., Коппе, Дж. Р. и Дэвис, Б. Г. Тиилгликозилирование олефиновых белков: S-связанный синтез гликоконъюгатов. Angew. Chem. Int. Эд. 48 , 7798–7802 (2009).
CAS
Статья
Google Scholar
Слеттен, Э. М. и Бертоцци, К. Р. От механизма к мыши: рассказ о двух биоортгональных реакциях. В соотв. Chem. Res. 44 , 666–676 (2011).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Чалкер, Дж. М., Бернардес, Дж. Л., Дэвис, Б. Г. и Бернардес, Г.J. L. Подход «теги и модифицируй» к сайт-селективной модификации белка. В соотв. Chem. Res. 44 , 730–741 (2011).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Чен, Й.-Х., Триола, Г. и Вальдманн, Х. Биоортогнальная химия для сайт-специфической маркировки и поверхностной иммобилизации белков. В соотв. Chem. Res. 44 , 762–773 (2011).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Мур, Дж.E. & Ward, W.H. Сшивка бычьего плазменного альбумина и кератина шерсти. J. Am. Chem. Soc. 78 , 2414–2418 (1948).
Артикул
Google Scholar
Сейм, К. Л., Обермейер, А. К. и Фрэнсис, М. Б. Окислительная модификация нативных белковых остатков с использованием нитрата церия (IV) и аммония. J. Am. Chem. Soc. 133 , 16970–16976 (2011).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Шлик Т.Л., Динг, З., Ковач, Э. В. и Фрэнсис, М. Б. Модификация двойной поверхности вируса табачной мозаики. J. Am. Chem. Soc. 127 , 3718–3723 (2005).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
МакФарланд, Дж. М., Джоши, Н. С. и Фрэнсис, М. Б. Характеристика трехкомпонентной реакции связывания белков с помощью изотопного мечения и спектроскопии ядерного магнитного резонанса. J. Am.Chem. Soc. 130 , 7639–7644 (2008).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Тилли, С. Д. и Фрэнсис, М. Б. Тирозин-селективное алкилирование белков с использованием пи-аллилпалладиевых комплексов. J. Am. Chem. Soc. 128 , 1080–1081 (2006).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Espuña, G.и другие. Йодирование белков с помощью IPy2BF4, нового инструмента в химии белков. Биохимия 4 , 5957–5963 (2006).
Артикул
CAS
Google Scholar
Хукер, Дж. М., Эссер-Кан, А. П. и Фрэнсис, М. Б. Модификация анилинсодержащих белков с использованием стратегии окислительного связывания. J. Am. Chem. Soc. 128 , 15558–15559 (2006).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Каррико, З.М., Романини, Д. В., Мель, Р. и Фрэнсис, М. Б. Окислительное связывание пептидов с вирусным капсидом, содержащим неприродные аминокислоты. Chem. Commun. 1205–1207 (2008).
Тонг, Г. Дж., Сяо, С. С., Каррико, З. М. и Фрэнсис, М. Б. Конъюгаты аптамерной ДНК вирусного капсида в качестве мультивалентных носителей для нацеливания на клетки. J. Am. Chem. Soc. 131 , 11174–11178 (2009).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Виттрок, С., Becker, T. & Kunz, H. Синтетические вакцины опухоль-ассоциированных гликопептидных антигенов за счет иммуносовместимого тиоэфирного связывания с бычьим сывороточным альбумином. Angew. Chem. Int. Эд. 46 , 5226–5230 (2007).
CAS
Статья
Google Scholar
Li, Y. et al. Генетически кодируемые аналоги алкенил-пирролизина для тиол-еновой реакции, опосредованной сайт-специфическим мечением белков. Chem. Sci. 3 , 2766–2766 (2012).
ADS
CAS
Статья
Google Scholar
Дондони, А., Масси, А., Нанни, П. и Рода, А. Новая стратегия лигирования для гликозилирования пептидов и белков: фотоиндуцированное тиоленовое связывание. Chem. Евро. J. 15 , 11444–11449 (2009).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ли Ю., Пань М., Ли Ю., Хуанг Ю.& Guo, Q. Тиолиновая радикальная реакция, опосредованная сайт-специфическим мечением белка посредством генетического включения аналога алкинил-L-лизина. Org. Biomol. Chem. 11 , 2624–2629 (2013).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Флит, Г. В. Дж. И Портер, Р. Р. Аффинное мечение антител с арилнитреном в качестве реактивной группы. Природа 224 , 511–512 (1969).
ADS
CAS
Статья
Google Scholar
Чин, Дж. У., Мартин, А. Б., Кинг, Д. С., Ван, Л. и Шульц, П. Г. Добавление фотосшивающей аминокислоты к генетическому коду Escherichia coli . Proc. Natl Acad. Sci. США 99 , 11020–11024 (2002).
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Чин, Дж.W. et al. Добавление п-азидо-L-фенилаланина в генетический код Escherichia coli . J. Am. Chem. Soc. 124 , 9026–9027 (2002).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Типпманн, Э. М., Лю, В., Саммерер, Д., Мак, А. В. и Шульц, П. Г. Генетически кодируемый диазириновый фотосшивающий агент в Escherichia coli . Chembiochem 8 , 2210–2214 (2007).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Chou, C., Uprety, R., Davis, L., Chin, J. W. & Deiters, A. Генетическое кодирование алифатического диазирина для фотосшивания белков. Chem. Sci. 2 , 480–480 (2011).
CAS
Статья
Google Scholar
Гриффин Б. А., Адамс С. Р. и Циен Р. Ю. Специфическое ковалентное мечение рекомбинантных белковых молекул внутри живых клеток. Наука 281 , 269–272 (1998).
ADS
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Адамс, С. Р. и др. Новые биомышьяковые лиганды и тетрацистеиновые мотивы для маркировки белков in vitro и in vivo : синтез и биологические применения. J. Am. Chem. Soc. 124 , 6063–6076 (2002).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Цукидзи, С., Miyagawa, M., Takaoka, Y., Tamura, T. & Hamachi, I. Лиганд-управляемая тозильная химия для мечения белков in vivo . Nat. Chem. Биол. 5 , 341–343 (2009). Вдохновляющая иллюстрация того, что повышенная врожденная или зависящая от ситуации селективность может быть достигнута при изменении конвергентного белка с помощью ряда механизмов и даже простых реакций .
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Тамура Т., Tsukiji, S. & Hamachi, I. Конструирование нативного FKBP12 лиганд-направленной химией тозила: свойства мечения и применение для фото-перекрестного связывания белковых комплексов in vitro, и в живых клетках. J. Am. Chem. Soc. 134 , 2216–2226 (2012).
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Ван Л., Брок А., Герберих Б. и Шульц П. Г. Расширение генетического кода Escherichia coli . Наука 292 , 498–500 (2001). Неестественные аминокислоты, сайт-селективно включенные в белки путем переназначения и супрессии янтарных кодонов, оказались одним из основных способов создания субстратов для сайт-селективной химии белков .
ADS
CAS
Статья
PubMed
Google Scholar
Лю К. и Шульц П. Г. Добавление нового химического состава в генетический код. Annu. Rev. Biochem. 79 , 413–444 (2010).
CAS
Статья
Google Scholar
Грейсс С. и Чин Дж. У. Расширение генетического кода животного. J. Am. Chem. Soc. 133 , 14196–14199 (2011).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Пэрриш, А. Р. и др.Расширение генетического кода Caenorhabditis elegans с использованием пар бактериальных аминоацил-тРНК синтетаза / тРНК. ACS Chem. Биол. 7 , 1292–1302 (2012).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Johnson, D. B. F. et al. Фактор высвобождения один несущественен в Escherichia coli . ACS Chem. Биол. 7 , 1337–1344 (2012).
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Айзекс, Ф.J. et al. Точная манипуляция с хромосомами in vivo позволяет заменять кодоны по всему геному. Наука 333 , 348–353 (2011).
ADS
CAS
Статья
PubMed
PubMed Central
Google Scholar
Amazon.com: Swanson Ajipure L-серин, фармацевтическая пищевая добавка с аминокислотами высокой чистоты USP, 500 мг, 60 растительных капсул: Здоровье и личная гигиена
Улучшите здоровье своего мозга с помощью добавки L-серина фармацевтического уровня.Эта аминокислота находится в центре внимания исследований когнитивного здоровья во всем мире, изучающих ее способность поддерживать мозг. Ваше тело естественным образом вырабатывает L-серин, который необходим для синтеза липидов, из которых состоят клеточные мембраны нейронов *.
Нейроны — это клетки мозга и нервной системы, которые отправляют и получают сообщения, в том числе сенсорную информацию о нашем окружении, передают команды от нашего мозга к нашим мышцам и многое другое.Их около 100 миллиардов, и они взаимодействуют с другими клетками по всему телу — эти важнейшие клетки составляют основу нашего существования.
Что такое L-серин?
L-серин — это аминокислота. Аминокислоты — это органические соединения, которые, помимо других функций, образуют белки. Все белки состоят из аминокислот, а разные типы белков — это просто разные комбинации аминокислот.Эта аминокислота является неотъемлемой частью здоровья клеток, особенно клеток мозга и нервной системы. *
Хотя L-серин необходим для организма, он не классифицируется как необходимое питательное вещество, потому что ваше тело вырабатывает некоторое количество L-серина самостоятельно. Тем не менее, диетические источники L-серина по-прежнему необходимы для поддержания адекватного уровня. *
Зачем нужен L-серин?
L-серин участвует в метаболическом синтезе питательных веществ, поддерживающих мозг и нервную систему.В частности, L-серин необходим организму для производства фосфатидилсерина, жирного вещества, которое составляет клеточные мембраны нейронов и служит как защитой для клеток, так и посредником между клетками. Фосфатидилсерин необходим в мозгу в больших количествах и необходим для когнитивной функции. *
L-серин для когнитивного здоровья и общего благополучия
L-серин — отличное дополнение к повседневному здоровью мозга, его иногда называют ноотропной добавкой, потому что он может улучшить когнитивные функции и поддерживать настроение.Продолжаются исследования для лучшего понимания многих ролей, которые L-серин может играть в поддержании здоровья мозга и когнитивных функций, и известно, что некоторые из самых долгоживущих коренных народов на планете также потребляют одну из диет с самым высоким содержанием L-серина в мире. мир.*
L-серин для функции нервной системы
L-серин имеет множество преимуществ для здоровья и функционирования нервной системы.